Adrián Melero Jurado
Sergi Perucho Raventós
Raúl Reyes Caballero

“Deontología y veterinaria legal”
                        1
“Ya sabes, puedes tocar un cartucho de dinamita,
pero si tocas una serpiente venenosa
se volverá contra ti, te morderá
y morirás tan rápido que ni siquiera será gracioso.”

                                      Steve Irwin




                                                       2
TENENCIA DE SERPIENTES VENENOSAS: “el vacío legal”

0. INTRODUCCIÓN                                                            4

1. LEGISLACIÓN GENERAL                                                    6

2. CUIDADOS Y MANTENIMIENTO EN CAUTIVIDAD                                 8
      2.1. Especies mantenidas más comúnmente en cautividad               8
      2.2. Cautividad: adaptación del hábitat natural al artificial      17
          2.1.1. Alimentación                                            17
          2.1.2. Tamaño y construcción del terrario                      19
          2.1.3. Temperatura                                             19
          2.1.4. Fotoperiodo y calidad de la luz                         20
          2.1.5. Agua y humedad                                          22
          2.1.6. Sustrato                                                23
          2.1.7. Material y Accesorios                                   25
      2.3. Normas de mantenimiento y manejo                              26
      2.4. Trabajo de campo sección mantenimiento:
          Entrevista a Luís Riera                                        34

3. REPRODUCCIÓN EN CAUTIVIDAD                                            36
     3.1. Reproducción de serpientes venenosas                           36
     3.2. Proceso reproductivo por especies                              39
     3.3. Trabajo de campo sección reproducción:
          Entrevista a Jorge Barros                                      51


4. USOS CIENTÍFICOS DE LAS SERPIENTES VENENOSAS                          58
      4.1. Introducción                                                  58
      4.2. Trasfondo epidemiológico                                      58
      4.3. Distribución mundial de las serpientes venenosas              59
      4.4. Proceso de elaboración de sueros antitoxina                   61
      4.5. Papel de las autoridades nacionales de reglamentación         89
      4.6. Trabajo de campo sección usos científicos de las serpientes
           venenosas: Entrevista a David Bitis                           91

5. VENENOS Y MORDEDURAS                                                  94
      5.1. Características anatómicas a considerar                       94
      5.2. Venenos                                                       96
      5.3. Actuación en caso de mordedura                                97


6. CONCLUSIONES                                                          99

7. BIBLIOGRAFIA                                                          100




                                                                           3
0. INTRODUCCIÓN

Las serpientes venenosas son uno de los muchos grupos de reptiles que actualmente se
comercializan y se mantienen en cautividad. La palabra “reptil” es el nombre colectivo
familiar que reciben los miembros de la clase Reptilia (incluye tortugas; cocodrilos y
caimanes; tuataras; lagartos; anfisbénidos y serpientes). Dicha clase es un grupo de
vertebrados de talla mediana que se suele incluir conjuntamente con la clase Amphibia
(incluye ranas y sapos; salamandras y tritones) en el estudio de la herpetología, una
rama de la zoología que trata de la evolución, la clasificación, la biología y la
distribución de estas dos clases de vertebrados.
Pero, ¿por qué hablamos de reptiles? Hablamos de reptiles porque después de más de
una década adentrado en este “mundo de escamas y sangre fría”, nos veíamos obligados
a acercar a estos animales a la sociedad y, al menos, intentar disolver muchos tópicos,
opiniones y preguntas que tantas veces hemos escuchado, como: “¿Qué hacen de bueno
las serpientes?” o bien “¿Sirven de algo los reptiles?”. Y es que en los tiempos que
corren, si paramos a observar aquello que nos rodea, una buena respuesta a estas
preguntas podría ser sin duda: “¿Y para qué sirven los humanos?”.
Sin duda, las serpientes venenosas son un grupo de reptiles emergentes en la sociedad
(los reptiles se encuentran en más de un 4% de los hogares españoles que tienen
mascotas), habiéndose producido a lo largo de estos últimos años un aumento
progresivo de estas especies entre los aficionados.
El hecho de que sean venenosas y de esta forma, consideradas como animales
peligrosos que pueden causar lesiones irreversibles o incluso la muerte por el efecto de
su veneno, se merecen un trato especial tanto legalmente, como a la hora de mantenerlas
y manejarlas.
Por eso, el objetivo principal de este trabajo es dar una visión actual del mantenimiento
y la reproducción de estas especies, su uso en la elaboración de sueros antitoxina, y
averiguar si realmente la actual legislación española frente a estas especies cubre
suficientemente los aspectos más relevantes a la hora de mantenerlas.
Finalmente, otro de los objetivos del presente trabajo -aunque secundario- es informar a
los principiantes o a personas ajenas a la herpetología, sobre el mantenimiento general
de los reptiles como animales de compañía, ya que según algunos datos facilitados por
clínicas veterinarias de animales exóticos, el 80-90% de les patologías en reptiles se
deben a un mal mantenimiento y manejo en los hogares. Por tal de evitar esto,


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elaboramos este trabajo, de donde se parte del estudio de los factores que influyen en la
vida de un reptil -en este caso serpientes- en su hábitat, para posteriormente escoger los
productos que puedan suplir con mejor eficiencia y garantías suficientes a estos factores
ambientales, al mantener los reptiles en un hábitat artificial.




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1. LEGISLACIÓN GENERAL
Normativa internacional
 Convenio europeo para la protección de animales de compañía. Strasbourg, 13 de
noviembre de 1987.
 Directiva 86/609/CEE del Consejo de 24 de noviembre de 1986 para la protección de
animales utilizados para la experimentación u otros fines científicos a fin de velar por
que se les conceda la atención adecuada y no se les cause dolor ni sufrimiento
innecesarios.
 Convenio de Berna, relativo a la conservación de la vida silvestre y del medio natural
de Europa. Berna, 19 de septiembre de 1979.
 Convenio sobre comercio Internacional de Especies Amenazadas de Fauna i Flora
Silvestres (CITES), celebrado en Washington el 3 de marzo de 1973


Normativa estatal
 Ley 50/1999, de 23 de diciembre, por la cual es regula la Tenencia de animales
Potencialmente Peligrosos para hacerla compatible con la seguridad de personas y
bienes y otros animales.
 Real Decreto 1739/1997, de 20 de noviembre, sobre medidas de aplicación del
Convenio sobre comercio Internacional de Especies Amenazadas de Fauna y Flora
Silvestres (CITES), celebrado en Washington el 3 de marzo de 1973 y del Reglamento
(CE) 338/97 del Consejo de 9 de diciembre de 1996, relativo a la protección de especies
de la fauna y flora silvestres mediante el control de su comercio. (BOE 285, de
28/11/97).
 Real Decreto 1201/2005, de 10 de octubre, sobre protección de los animales
utilizados para experimentación y otros fines científicos. («BOE» 252, de 21-10 2005).
 Decreto Legislativo 2/2008, de 15 de abril, por el que se aprueba el Texto refundido
de la Ley de protección de los animales.




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Normativa autonómica
 Ley 22/2003, de 4 de julio, de protección de los animales. (DOGC 3926, de
16/07/2003)
 Decreto 6/1999, de 26 de enero, por el que se establecen las condiciones de
mantenimiento de los animales de compañía. (DOGC 2817, de 01/02/99)
 Decreto 328/1998, de 24 de diciembre, por el cual se regula la identificación y el
Registro general de animales de compañía. (DOGC 2798, de 04/01/99)
 Orden de 23 de diciembre de 1991, de establecimiento de medidas necesarias para el
mantenimiento de animales salvajes en cautividad.
 Orden de 28 de noviembre de 1988, Creación del Registro de núcleos zoológicos de
Cataluña. Parques, reservas, residencias, equitación y tiendas, entre las secciones
sometidas al Registro. Procedimiento de inscripción. Regulación. (DOGC 1087, de
30/12/88)
 Ley 3/1988, de 4 de marzo, de la Generalitat de Catalunya, sobre protección de los
animales. (DOGC 967, de 18/03/88). Ley 3/1994, de 20 de abril, de modificación de la
Ley 3/1988, de protección de los animales. (DOGC 1890, de 29/04/94). Ley 18/1998,
de 28 de diciembre de modificación de la Ley 3/1988, de 4 de marzo, de protección de
los animales. (DOGC 2801, de 08/01/99)




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2. CUIDADOS Y MANTENIMIENTO EN CAUTIVIDAD

2.1. Especies mantenidas más comúnmente en cautividad
En España, poseemos un gran número de serpientes, de un total de trece especies, cinco
son venenosas y de estas cinco, tres corresponden a la familia Viperidae y dos a la
Colubridae. Pero el hecho de que estas especies estén protegidas, y por tanto, prohibido
su mantenimiento en cautividad (excepto para fines científicos muy concretos), hace
que la mayoría de especies venenosas mantenidas no sean autóctonas.
La clasificación general de estas serpientes se basa en dos grandes familias: familia
Viperidae    y familia Elapidae. A continuación, se exponen las características más
importantes de los géneros mantenidos habitualmente en cautividad


FAMILIA ELAPIDAE
Formada por aproximadamente unas 200 especies, caracterizadas por un cuerpo
estilizado parecido al de los colúbridos. La mayoría de especies de esta familia apenas
alcanzan un metro de longitud.


Subfamilia Elapinae
MAMBAS: Género Dendroaspis
En el género Dendroaspis encontramos las conocidas mambas, serpientes de actividad
arborícola, esbeltas y ágiles, propias de los bosques y sabanas del centro y sur de África.
La mamba negra llega a medir 4 metros de largo y es la mayor de este género. Todas
ellas son serpientes muy peligrosas y extremadamente agresivas, especialmente antes de
aclimatarse al terrario.
El terrario destinado a alojar a una mamba debe ser de grandes dimensiones, tan alto
como largo. El suele debe estar cubierto por una mezcla de suelo de bosque y arena
sobre el cual dispondremos algunas grandes piedras planas superpuestas de modo que
formen abrigos con ellas. Una rama bien ramificada y algunos arbustos secos también
serán de su agrado. La temperatura diurna debe ser de 26-30ºC y la nocturna entre
22-24ºC. La alimentación, distribuida durante el día, consistirá en ratones, ratas,
hámsters o gorriones.




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COBRAS: Género Naja
Este género incluye unas 20 especies y diversas subespecies de serpientes conocidas
vulgarmente con el nombre de cobras. Actualmente, el género está en plena revisión
taxonómica, por lo que el nombre de especies varía según la fuente consultada. Son
serpientes terrestres que viven en los biotopos más diversos, desde las estepas de
arbustos espinosos a los márgenes de selvas tropicales, desde el sur de África hasta el
sureste de Asia. Sus longitudes máximas oscilan entre 1,4 y 2,5 metros. Muchas de estas
especies despliegan un capuchón característico al excitarse.




Subfamilia Bungarinae
Género Ophiophagus
El género Ophiophagus es muy próximo al género Naja, e incluye la mayor de las
serpientes venenosas actuales, la cobra real (Ophiophagus hannah) del sur y sureste de
Asia. Su mantenimiento en terrarios es problemático, ya que se alimenta principalmente
a base de otras serpientes. En algunos casos han llegado a aceptar ratas muertas y tiras
de carne con “aroma” a serpiente.


Otros elápidos
Otros de los elápidos importantes son el taipán (Oxyuranus scutellatus), una de las
serpientes australianas más venenosas y reproducida durante años en cautividad; y la
cobra acuática (Boulengerina annulata) pertenece al único género acuático de la
familia. Se alimenta principalmente a base de peces (gambusias, por ejemplo) y
anfibios.


SERPIENTES DE CORAL: Género Micrurus y Micruroides
Las serpientes de coral tienen una amplia distribución desde el sur de Estados Unidos,
pasando por América Central, hasta Argentina aproximadamente a 40° Latitud Sur. Las
serpientes de coral se caracterizan por la presencia de anillos coloridos y muy vistosos
que adornan el cuerpo y que se disponen comúnmente en tríadas y en algunas especies
de dos en dos. El color, la disposición y el número de los anillos es característico para
cada especie. La coloración es típica; rojo, amarillo (o blanco), y los anillos negros.
Miden desde 0,40 m 1,50 m de longitud. La cabeza está diferenciada del cuerpo y está
cubierta por grandes escamas brillantes. No tienen fosetas loreales. El cuerpo, en las

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regiones dorso-laterales está cubierto por escamas brillantes, lisas, no traslapadas y en
una escala constante 15-15-15. Salvo muy pocas excepciones, las corales tienen la cola
muy corta, de ahí deriva el nombre de género.
El terrario donde se alojen debe tener una humedad del 70-80% y una temperatura de
21-24ºC por la noche y 34-38ºC por el día.
Casi todas las especies de Micrurus son ofiófagas, se alimentan de otras serpientes de
menor tamaño. Es frecuente que lleguen al canibalismo, consumiendo ejemplares de su
misma especie. En algunos casos incluyen en su dieta saurios y hasta anguilas. Suelen
excavar hormigueros de hormigas negras en busca de pequeños ofidios que se alimentan
de estas hormigas.


SERPIENTES ACUÁTICAS: Subfamilia Hidrophinae
Esta subfamilia comprende especies de vida completamente acuática. Se encuentran
más en el área que abarca el Golfo Pérsico y los mares y océanos alrededor del
archipiélago Indo australiano, llegando hasta las costas americanas por el Océano
Pacífico. No se encuentran en el Océano Atlántico ni sus mares y tampoco en las aguas
de Eurasia. Está formado por 18 géneros distintos, y sólo se conocen dos especies del
género Hydrophis que se encuentran en agua dulce. Se cree que son especies atrapadas
hace     muchos      años   y     se    han    ido   adaptando    al     nuevo   hábitat.
La marca distintiva más obvia de muchos de ellos es su cola con forma de paleta.
Además, otras características igualmente importantes, incluyen músculos valvulares que
permiten mantener las narinas cerradas y también la muesca por donde sale la lengua.
Hay poca información sobre su mantenimiento en cautividad, ya que debido a sus
necesidades acuáticas los aficionados y expertos prefieren decantarse por especies
terrestres.
Los géneros que conforman la subfamilia son los siguientes:
Acalyptophis , Aipysurus, Astrotia, Disteira, Emydocephalus, Enhydrina, Ephalophis,
Hydrelaps, Hydrophis, Kerilia, Kolpophis, Lapemis, Microcephalophis, Parahydrophis,
Pelamos,      Polyodontgnathus,        Praescutata   (=Thalassophina),     Thalassophina
(=Praescutata), Thalassophis.




                                                                                       10
FAMILIA VIPERIDAE
Subfamília Viperinae
Género Bitis
                                                         © www.giftschlangen-kampa.de
Este es un género que abarca varias especies de
víboras distribuidas en África y sur de la
Península Arábica. Este incluye las víboras más
grandes   y    más     pequeñas   del    mundo.    La
característica más importante del género es la
capacidad que tienen para inflar y desinflar el
cuerpo    en   forma     de   pantalla   al   sentirse
amenazadas, mientras soplan y silban con fuerza.
Actualmente, se reconocen 14 especies, aunque la
especie tipo del género es B. arietans, cuya
                                                         Fig. 1. Bitis gabonica
distribución por África es la más amplia, además
de poseer un gran tamaño y un potente veneno. Se encuentra en todos los hábitats - la
mayoría de las veces asociadas a pastizales rocosos - excepto en desiertos y bosques
tropicales. Se suele adaptar muy bien a las condiciones de terrario. Para su bienestar es
conveniente proporcionarles una calefacción de suelo a unos 28-32ºC.
Por otra parte, encontramos la famosa víbora del Gabón (Bitis gabonica, Fig. 1), que se
encuentra en junglas y sabanas del África Subsahariana. Es el miembro más grande del
género Bitis, y la especie de vipérido más pesada del mundo; tiene el veneno de mayor
rendimiento de todas las serpientes venenosas y los colmillos más grandes, con 5,5 cm
de longitud. Existen dos subespecies actualmente reconocidas.


Género Vipera
Dentro del Género Vipera encontramos las
víboras verdaderas, como la víbora europea
(Vipera berus), la víbora cornuda (V.
ammodytes, Fig.2), la víbora áspid (V. aspis)
o la víbora hocicuda (V. latastei).
La víbora europea tiene una amplia área de
distribución que abarca desde España hasta
Siberia, siendo una de las más conocidas de
                                                   Fig. 2. Vipera ammodytes


                                                                                        11
su género. Esta especie puede vivir muchos años en terrario alimentándose a base de
ratones, aunque algunos ejemplares sólo aceptan ranas.


La víbora áspid del sureste de Europa, la víbora cornuda de Oriente Medio y sureste de
Europa y la v. hocicuda de la península Ibérica y noroeste de África, tienen el hocico
arremangado hacia arriba. De todas ellas, la que conlleva una dificultad menor a la hora
de mantenerla en cautividad es la V. cornuda (V. ammodytes), cuya envergadura alcanza
unos 60-70cm. Su medio preferido son los terrenos áridos pero con matorrales, las
llanuras y los campos, situada muchas veces tomando el sol sobre montículos de rocas.
Como en la mayoría de serpientes, la temperatura media deberá ser de unos 24-28ºC
durante el día e inferior a los 20ºC por la noche. Se alimentan principalmente a base de
ratones, gorriones y pollitos.


Género Daboia
Incluidas antiguamente en el Género Vipera, las víboras orientales se incluyen
actualmente en este género.
La víbora de Oriente (Daboia lebetina) suele ser muy resistente en terrario y no da
problemas a la hora de alimentarla. A la víbora del Atlas (D. mauritanica), al igual que
a la víbora de Oriente le gusta mucho el calor, mientras que a la víbora otomana (D.
xanthina) habita zonas más altas de Turquía, en condiciones más frías.
Dentro del género también encontramos otras víboras, como la v. de Palestina (V.
palestinae) o la víbora de Russell (V. russelli), ampliamente distribuida por el sur de
Asia. Necesitan temperaturas de 27-32ºC durante el dia y 22-24ºC por la noche
(colocando una fuente de calor en el suelo a una tª de 28-35ºC). A las v. de Russell les
gusta que se las rocíe regularmente con agua tibia. Todo el género se alimenta
normalmente de ratones, aunque algún ejemplar podría dar problemas y rechazarlos.


Género Echis
Este género, englobando las víboras de escamas aserradas, tiene una amplia área de
distribución que abarca desde África hasta el centro y el sur de Asia. Su veneno está
considerado uno de los más potentes, casi siempre mortal. Tanto E. carinatus como E.
coloratus se han mantenido en cautividad con éxito, alimentándose sin problemas a base
de ratones, grillos y, especialmente, de lagartijas.


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Subfamilia Crotalinae
La subfamilia de los crótalos (a veces clasificada individualmente como Familia
Crotalidae) comprende una docena de géneros caracterizados por la posesión de un
órgano detector de cambios de temperatura, situado entre el hocico y los ojos, que sirve
para que estas serpientes nocturnas y crepusculares ataquen y cacen de forma correcta a
sus presas de “sangre caliente”. El nombre de víboras de foseta, que a veces reciben
algunos crotálidos, alude a las profundas cavidades que presentan a cada lado de la
cabeza, entre el ojo y la fosa nasal correspondiente, donde se abren las terminaciones
nerviosas sensibles al calor.


Género Agkistrodon
El género Agkistrodon engloba a las serpientes conocidas como serpientes mocasín,
cuya distribución se localiza en América del Norte y Asia.
El mocasín de agua (Agkistrodon piscivorus) es un crotálido de cuerpo grueso y
costumbres anfibias, confundiéndose fácilmente con las serpientes acuáticas del género
Nerodia. En la naturaleza se alimenta de una gran variedad de presas, mientras que en
cautividad puede ofrecérseles peces y pequeños mamíferos. Debe reproducirse en
cautividad un ambiente húmedo y acuoso, pero vigilando que la temperatura no sea
excesivamente baja.
Esta especie tiene las subespecies siguientes: A. p. piscivorus, A. p. conanti, A. p.
leucostoma.
Por otro lado, Agkistrodon contortrix es una especie de costumbres crepusculares y
nocturnas que vive en los bosques, las praderas y pastos de gran parte de los estados del
este y centro de los EEUU. Su bonita coloración, su fácil mantenimiento y el no ser
excesivamente peligrosa la hacen una de las especies más populares entre los
aficionados. Debe ser mantenida individualmente, ya que no sólo se alimenta
vorazmente de ratones, pequeñas ratas, pollitos o gorriones, sino que también incluye a
sus congéneres en la dieta habitual. Si la temperatura es demasiado elevada, suelen dejar
de comer.
Esta especie tiene las subespecies siguientes: A. c. contortrix, A. c. mokasen, A. c.
laticinctus, A. c. pictigaster.




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Género Bothrops
Bothrops es un género que agrupa unas 50 especies distribuidas desde el noreste de
México, América Central, incluyendo las Antillas menores, y la mayor parte de
Sudamérica, representando los más diversos tipos ecológicos y morfológicos. El
nombre genérico se deriva de las palabras griegas bothros y ops que significan "fosa" y
"ojo" o "rostro"; una alusión a la foseta loreal, un orificio a cada lado de la cabeza entre
el ojo y el orificio nasal, que como ya se ha dicho anteriormente se trata de un órgano
muy sensible a las variaciones de temperatura que sirve a detectar las presas de “sangre
caliente”. Los miembros de este género - y más en particular B. asper, B. atrox y B.
jararaca - son responsables de más víctimas mortales en las Américas que cualquier
otro grupo de serpientes venenosas.

                                            © Bryan D. Hughes                   fieldherper.com
Género Crotalus
Este género engloba las serpientes de
cascabel, la mayoría de las cuales son
propias del suroeste de los EEUU y
México. Sólo una especie llega hasta
América del Sur (C. durissus). Todas
tienen    su     característico   crótalo
(“cascabel”) caudal con el que emiten
                                            Fig. 3. Crotalus atrox
su   típico    sonido   de   advertencia,
excepto la serpiente de cascabel de Santa Catalina         (C. catalinensis) que no tiene. En
cuanto a su mantenimiento, se han mantenido y reproducido bastantes especies en
Europa y EEUU, siendo la especie C. atrox (Fig. 3) una de las más fáciles de mantener
y una de las que más años vive en terrario. C. ruber, C. viridis y C. horridus viven en
condiciones similares a la anterior. El crótalo de mayor tamaño es C. adamanteus, con
una envergadura que puede llegar a los 2,5 m y unos 10kg de peso. Los ejemplares
jóvenes siempre se adaptan mucho mejor al terrario que los adultos. Como curiosidad,
la especie C. cerastes –equivalente a la víbora cornuda del desierto del viejo mundo
Cerastes cerastes- y de la misma forma que esta, necesita un sustrato arenoso de unos
10cm de grosor. En cuanto a la alimentación varía mucho de un individuo a otro, ya que
se alimentan bien de ratones, aunque algunas serpientes se niegan a comérselos y
prefieren morir de hambre si no se les ofrece lagartos u otros reptiles.
Otras especies de crótalos son C. lepidus y C. scutulatus.

                                                                                             14
Género Lachesis
Este género está conformado por tres especies que habitan los bosques remotos en
América Central y América del Sur.
Los adultos tipicamente miden de 200 a 250 cm de largo, aunque algunos ejemplares
pueden crecer hasta 300 cm. El ejemplar más grande conocido llego a medir poco
menos de 365 cm, por lo que es la serpiente venenosa más larga en el Hemisferio
Occidental. Es también la víbora más larga del mundo, aunque no es la más pesada (su
peso es superado por la víbora de Gabón y la serpiente de cascabel diamante del Este).
Las especies son: L. melanocephala o cascabel muda cabecinegra (black-headed
bushmaster en inglés), L. muta o cascabel muda sudamericana (South American
bushmaster), y L. stenophrys o cascabel muda centroamericana (Central American
bushmaster).
La cola del Bushmaster termina con una espina córnea, que a veces vibra cuando se les
molesta de una manera similar a las serpientes de cascabel. Por ello a veces se la
denomina "serpiente de cascabel muda". Es una especie terrestre y nocturna que se
alimenta principalmente de pequeños mamíferos (ratones, pequeñas ratas, etc). Suele
responder rápidamente a perturbaciones, a menudo inflando el cuello y vibrando la cola,
y puede volverse agresiva cuando se le molesta.
Estas serpientes se ven seriamente afectadas por el estrés asociado con la vida cautiva, y
a menudo no aguantan mucho tiempo en cautiverio. Esto hace que sea difícil de obtener
un veneno "bueno y saludable" para fines de estudio. Se ha observado que el
rendimiento del veneno de estos especímenes se reduce a ¼ afectando también al grado
de toxicidad del mismo. Esto hace que se mantengan otras especies en terrario antes que
esta.


Género Sistrurus
Conocidas también genéricamente como serpientes de cascabel enanas, las especies del
género Sistrurus son propias Canadá, EEUU y México. Difieren de los Crotalus en que
su tamaño es más pequeño (en general 40-80 cm) y tienen una escamación diferente: los
miembros del género Sistrurus tienen nueve grandes placas de cabeza (igual que el
género Agkistrodon), mientras que en el género Crotalus (y casi todos los demás
vipéridos) tiene la cabeza cubierta de un gran número de pequeñas escamas. Además,
tienen un cascabel relativamente pequeño que produce un sonido más alto que el de los
Crotalus.

                                                                                       15
En cuanto a la temperatura del terrario, la serpiente de cascabel enana de México
(S. ravus) al igual que igual que la serpiente de cascabel enana de las llanuras
(S. miliarius) necesita unos 20-30ºC por el día, e hiberna a temperaturas algo más bajas.
En cuanto a su alimentación, tanto en estas dos especies como en la massasauga (S.
catenatus) su dieta base se compone de ratones y otros pequeños vertebrados.


Género Trimeresurus
Trimeresurus incluye a especies cuya distribución se encuentra en Asia, desde Pakistán,
India, China, hasta el Sureste asiático y las Islas del Pacífico. Se reconocen actualmente
unas 35 especies.
Son serpientes en su mayoría relativamente pequeñas (aunque alguna puede llegar a los
160cm), principalmente arbóreas, con cuerpos delgados y colas prensiles. Normalmente
son de color verde, pero algunas especies también tienen un color amarillo, negro,
naranja o marcas de color rojo.
Su hábitat es selvático pero se encuentran algunas especies en lugares de montaña con
temperaturas más bajas, entre los 18 o 22 ºC de las especies más montañosas hasta los
26 o 32ºC de las selváticas, la humedad en estos lugares es muy alta pudiendo estar al
80 o 90 % en días en los que no llueve.
Su dieta incluye una variedad de otros animales, incluyendo roedores, lagartos, anfibios
y aves, aunque en cautividad es preferible decantarse por habituarla a una alimentación
a base de ratones, por los problemas que comporta suministrar anfibios o aves cada
semana.
Algunas de las especies conocidas son: T. albolabris, T. fasciatus, T. brongersmai, T.
septentrionales, T. purpureomaculatus, etc.




                                                                                       16
2.2. Cautividad: adaptación del hábitat natural al artificial.


Cuando se mantienen reptiles en cautividad y por tanto en un hábitat artificial –y un
espacio reducido- se debe intentar reproducir e imitar al máximo su hábitat natural, con
la finalidad de que este sea confortable y así evitar que los inquilinos sufran estrés. Por
este motivo, en este apartado se hablará de las diferentes alternativas que encontramos
para suplir los diferentes factores a los que están expuestos –así como su alimentación-
en la naturaleza, destacando las más adecuadas, por tal que esta “imitación” se parezca
al máximo a su hábitat natural.
Las deficiencias nutricionales y el mal manejo en la alimentación de estos reptiles en
cautividad a menudo son causa de enfermedad e incluso de muerte. Este hecho lo
podemos comprender mejor si paramos a pensar en la gran variedad de especies que
comprende este grupo de animales, y el tipo de hábitat donde los podemos encontrar.
Cada especie está adaptada a un tipo de terreno, temperatura, humedad y dieta diferente,
que dependerá de su hábitat natural. A pesar de ello, se hará una diferenciación básica
entre las condiciones necesarias para especies selváticas y para especies desérticas y
semidesérticas.


2.2.1. Alimentación
Tal y como se ha comentado, cada especie está adaptada a unas condiciones
determinadas según el hábitat al que pertenece, igual que la dieta. Es importante tener
en cuenta todos estos factores a la hora de analizar si la dieta de un reptil es adecuada en
composición y/o complementación, porque si un reptil no ve satisfechas sus necesidades
ambientales específicas para su especie, el resultado se puede traducir en un estrés que
tendrá efectos negativos sobre la ingesta i el estado metabólico.
La realidad es que actualmente, y debido a esta amplia variabilidad interespecífica, es
muy complicado encontrar información fiable y consistente referente a la nutrición de
estos reptiles.
En el caso de los ofidios, nos encontramos frente a la categoría de carnívoros estrictos,
ya que son animales que consumen presas vivas (vertebradas o invertebradas) y que, por
tanto, los consideramos carnívoros e incluso en algunos casos insectívoros estrictos.
Debemos tener en cuenta que ni tan sólo los expertos están siempre de acuerdo en
cuanto a categorías, y que solamente representan una especie de consenso general.


                                                                                         17
Dependiendo de las costumbres del animal, de su tamaño y del tamaño de su presa, el
animal ingerirá una sola presa por comida, o varias. En general, los adultos acostumbran
a comer una vez a la semana mientras que los juveniles 2-3.


Las presas son vertebrados enteros (ratones, pájaros pequeños y lagartos), invertebrados
(gusanos o grillos) o una combinación de ambos. A pesar del amplio rango de presas,
estas ofrecen los niveles nutricionales apropiados: altos niveles de proteína (30-60% de
la EM) que derivan de músculos y órganos de la presa, grasa (40-70% de la EM) y una
cantidad insignificante de carbohidratos (Tabla 1). Las fuentes de carbohidratos para
estos animales son la grasa (9Kcal EM/g) y las proteínas (4 Kcal EM/g) y teniendo en
cuenta la baja ingesta de carbohidratos, es común que presenten altos niveles de
gluconeogénesis. No debemos dar presas adultas obesas, porque tienen una ratio
desequilibrado de grasa y nutrientes, o neonatos porque podrían no cubrir las
necesidades de calcio o vitaminas (contienen niveles de calcio inferiores debido a la
inmadurez de su estructura ósea. Parte del aporte de calcio en estas presas proviene de su
contenido intestinal (leche), por lo que si se ofrecen con el tracto gastrointestinal vacío
podremos observar deficiencias de calcio). Las presas invertebradas también
proporcionan grasa y proteína suficiente. Para reptiles que solo comen invertebrados
debemos empolvarlos con un suplemento vitamínico y mineral y alimentar con dieta
rica en calcio a las presas antes de ofrecerlas. Vigilar la toxicidad (vitaminas A y D,
fósforo, selenio, iodo…) y el descenso del alimento por la baja palatabilidad que
provoca el suplemento. A veces la nutrición es extremadamente difícil por la baja
adaptación del animal a la cautividad o la exclusividad de la dieta.




              Tabla 1. Composición nutricional aproximada de una presa vertebrada




                                                                                        18
Generalmente podremos variar el tipo de presa (ratones, hámsters, ratas o conejos),
siempre y cuando esta sea adecuada en tamaño en relación con el predador. En
ocasiones, sobretodo en casos de serpientes recién nacidas, se puede producir el rechazo
de la presa; en estos casos podemos camuflar el olor de esta con la de otra que ya haya
sido aceptada anteriormente, mediante el rozamiento de una contra la otra.


En el caso de les especies piscívoras, evitaremos la transmisión de parásitos congelando el
pescado y prevendremos la deficiencia en tiamina informando al propietario que lo debe
cocer antes de congelarlo, ya que un tratamiento a 80ºC durante 5 minutos desnaturalitzará
la tiaminasa (enzima que degrada la tiamina).


2.2.2. Tamaño y construcción del terrario
Cuanto más grande, mejor condición física tendrá el reptil, mejor reproducción y menor
daño auto-provocado. En cuanto a las medidas, se recomienda 2/3 de su longitud para
las serpientes, en caso de que se mantengan de forma individual. Terrarios grandes y
amplios se asocian con menos auto-mutilaciones y con una mejor condición corporal.
Lo más importante a tener en cuenta, es que el tamaño se adecue a la medida del animal
adulto. Algunas especies, sedentarias en libertad, no requerirán mucho espacio en
cautividad. Por otra parte, la orientación del terrario dependerá del hábitat natural de
cada especie. Así pues, especies arbóreas requerirán un terrario de disposición vertical,
mientras que en especies terrestres será horizontal.
Las instalaciones multindividuales o multiespecíficas deben contemplar la depredación,
la competencia, la densidad poblacional, la transmisión parasitaria e infecciosa.


2.2.3. Temperatura
Los reptiles son ectotermos y heterotermos (presentan un rango de diferentes
temperaturas de acuerdo con las temperaturas ambientales); los cambios de temperatura
corporal afectan al metabolismo y actividad del animal (variando el consumo de
alimentos y las necesidades energéticas). Por eso, es necesario proporcionar un
gradiente térmico en el espacio (diferentes temperaturas en el terrario) y en el tiempo
(variación circadiana y estacional de la temperatura). La temperatura debe ser
controlada.
A continuación se presenta una guía genérica de temperatura para reptiles desérticos-
semidesérticos y selváticos en cautividad:

                                                                                        19
                                  Día        Noche              Hibernación
Desértico-semidesértico           27-35ºC    21-27ºC            3,8-15ºC/ 8-10 semanas
Selvático                         26-30      19-26              3,8-15ºC/ 8-10 semanas


Actualmente encontramos diversos accesorios que substituyen con garantías los rayos
infrarrojos que irradia el sol i que aportan la energía calorífica necesaria a los reptiles
para llevar a cabo de forma correcta su actividad metabólica. Dentro de estas fuentes de
calor, distinguimos entre luminosas y no luminosas (Fig. 4), tal como se indica a
continuación:


Fuentes de calor luminosas
- Bombillas comunes
- Bombillas de reposo para reptiles (basking lights)
- Spots
- Bombillas infrarrojas
- Bombillas de uso nocturno
- Bombillas de espectro completo
Fuentes de calor no luminosas
- Bombillas de cerámica
- Rocas calefactoras
- Cable calefactor
- Esterilla o placa calefactora
- Termocalefactor
                                                                      Fig. 4. Fuentes de calor
2.2.4. Fotoperiodo y calidad de la luz
Aunque lo preferible para los reptiles sería aportar una exposición directa y sin filtros a
la luz solar, esto no es posible en muchos lugares del mundo. En sustitución, estamos
obligados a proveerles de luz artificial que simule el mismo espectro del sol, incluyendo
luz ultravioleta (UV), luz visible y luz radiante, que también son importantes. Los
requisitos de iluminación de los reptiles varían de acuerdo con las necesidades
nutricionales de la especie en cuestión. En general se cree que los reptiles herbívoros,
insectívoros, y la mayoría de omnívoros tienen un requisito absoluto para la radiación
ultravioleta (UV), específicamente en el espectro UVB. En nuestro caso, la mayoría de

                                                                                          20
serpientes son carnívoras y el hecho de ingerir presas enteras (con los huesos y demás
estructuras ricas en calcio) hace que las deficiencias de calcio se observen en contadas
ocasiones.
La alta calidad de luz visible es necesaria para los reptiles para maniobrar en el
ambiente, identificar la comida y llevar a cabo los comportamientos normales. La mejor
manera de proporcionar una luz visible de la mejor calidad es con luz fluorescente. El
índice de representación del color es uno de los métodos para caracterizar la calidad de
la luz visible, y sus rangos van de 0 a 100, siendo 100 la luz solar (1). La luz radiante se
encuentra en la gama alta del espectro y es importante para generar el calor que requiere
un ectotermo.
La luz incandescente se usa como método primario para proveer luz radiante.
La radiación de UV puede ser dividida en tres tipos: A, B, y C. Los tipos de radiación
UV que es importante considerar con reptiles cautivos son UVA Y UVB. Los UVA
están asociados con la regulación de comportamiento en reptiles, mientras que UVB
principalmente    está   asociado     con    la   síntesis   fotoquímica      de    la    1-25
dihidroxicolecalciferol (o forma activa de la vit. D). La vitamina D3 es necesaria para la
absorción de calcio en el tracto intestinal. Una deficiencia de la luz ultravioleta,
especialmente los UVB, a menudo resulta en la enfermedad ósea metabólica de origen
nutricional (NMBD). Por el contrario, los altos niveles de UVB pueden ser peligrosos,
causando enfermedades oculares y cáncer de piel.
La cantidad de luz recibida por día, o fotoperiodo, es importante para los reptiles. Los
temporizadores eléctricos son baratos y están ampliamente disponibles, y las luces se
pueden fijar para imitar el fotoperiodo natural o para ajustarlo en cualquier dirección.
Estos deberían tener siempre un fotoperiodo de unas 14 horas en verano (coincidiendo
normalmente con la época de cría) y 12 en invierno. En climas templados: 15 horas en
verano, 12 en primavera y otoño y 9 horas en invierno.


Actualmente encontramos diferentes fuentes de luz
artificial en los establecimientos especializados en
animales exóticos, que son los siguientes:
- Bombilla incandescente: emiten radiación visible e
infrarrojos.
- Fluorescente: hay de dos tipos, los que tienen un uso
                                                               Fig. 5. Fluorescentes ultravioletas


                                                                                             21
doméstico, y que a menudo colocamos en las cocinas, y los que utilizamos para reptiles.
Los de uso doméstico sólo generan luz visible, y los especiales para reptiles, aparte de
luz visible emiten UVA, UVB, i IR (en menor porcentaje).
- Luz de vapor de mercurio: emiten luz visible, UVA, UVB, i IR.
- Luz de halogenuros metálicos: emiten luz visible, UVA, UVB, i IR.
-Bombillas de bajo consumo: emiten luz visible, UVA, UVB, i IR.


La fuente luminosa productora de rayos ultravioletas más utilizada de las citadas
anteriormente es el fluorescente, el cual podemos adquirir fácilmente en centros
especializados en animales exóticos. Es recomendable renovarlo cada 8-9 meses por tal
de garantizar su buen funcionamiento y la aportación absoluta de los rayos
ultraviolados. Se debe destacar que el uso de fluorescentes, actualmente, se está
sustituyendo por bombillas de bajo consumo de amplio espectro.


Una hipótesis actual muestra que el fotoperiodo y la temperatura inadecuada resultan en
repetidos fracasos reproductivos como consecuencia de la vitelogénesis anormal, con
reabsorción crónica de la yema y, en última instancia, granulomas o tumores de ovario.
El fotoperiodo inadecuado también puede resultar en obesidad de animales que
normalmente estarían inactivos en los meses de invierno, pero que siguen comiendo, a
pesar de que su metabolismo es más bajo por la disminución de la temperatura
ambiente. Se deben hacer modificaciones en función del origen del reptil, y de la latitud
en la que se encuentre.


2.2.5. Agua y humedad
El agua ha de estar disponible todo el tiempo para la mayoría de reptiles, ya sean de
costumbres selváticas o desérticas, ya que a pesar de que los reptiles desérticos obtienen
el líquido fundamentalmente de sus presas siempre es bueno que gocen de un recipiente
con agua limpia, ya que a menudo muchas especies les gusta sumergirse para eliminar
la suciedad y facilitar la muda de piel. Si no se compensan las pérdidas de agua cutánea
y respiratoria el animal puede sufrir deshidratación, que se puede asociar a patologías
renales.


Suministrar agua de buena calidad a los reptiles es tan importante como adecuar su
química a cada especie (pH, cantidad de cloro, oxigenación...) con la finalidad de

                                                                                       22
impedir que con esta se ingieran elementos químicos nocivos para su organismo.
Existen tres tipos de agua que podemos utilizar:
- Aguas naturales: no son muy recomendables ya que en la mayoría de los casos
contienen sustancias contaminantes y nocivas para los animales.
- Agua embotellada: muchas veces tienen demasiadas sales minerales.
- Aguas municipales: son las más recomendadas ya que siempre se tratan
cuidadosamente y no contienen sustancias malignas.
En cuanto a la humedad, tal y como se ha procedido hasta ahora, se deberá reproducir
en el hábitat artificial (terrario) y en la medida de lo posible, la humedad relativa a la
cual están adaptados los reptiles a mantener. Este grado de humedad, en especies
desérticas y semidesérticas es relativamente bajo, alrededor de un 30-50%, mientras que
en especies selváticas en general es de un 80-90%.
Esta humedad no debe conseguirse a expensas de una deficiente ventilación para evitar
la proliferación fúngica y bacteriana.
En especies desérticas-semidesérticas el ambiente en general debe ser seco, de forma
que no será necesario colocar ningún accesorio por tal de generar humedad si el terrario
está bien ventilado, mientras que en especies selváticas, donde la humedad en el terrario
debe ser mucho más elevada que la ambiental hay varias formas de proporcionársela:
uno de los métodos más sencillos es colocar una cajita de plástico llena de un sustrato
húmedo -como la turba o el musgo- o bien pulverizando diariamente el terrario con
agua. También, muchos herpecultores utilizan vaporizadores o humidificadores, e
incluso, para especies estrictamente arbóreas el fondo del terrario puede estar inundado
de agua, que con buena ventilación, mantiene una humedad alta y constante.


2.2.6. Sustrato
El sustrato es un factor muy importante, ya que se debe tratar de una sustancia no
tóxica, fácilmente digestible, absorbente y fácil de limpiar. El estado del sustrato irá
ligado a la salud del animal. Aquellos que sean demasiado básicos o ácidos, demasiado
secos o húmedos y sucios contribuirán a la aparición de problemas respiratorios y
dermatológicos.
A la hora de sustituir los sustratos del medio natural a la vida en cautividad hay dos
opciones: los sustratos naturales industriales, o bien los sustratos artificiales o sintéticos.




                                                                                            23
Sustratos naturales industriales
Dentro de los sustratos naturales industriales, los más conocidos y utilizados para
reptiles son los siguientes:
- Musgo natural (tanto viva, como seca): perfecta para rana, sapos, salamandras,
serpientes y otros reptiles que necesiten un sustrato parecido y que retenga humedad.
- Sustrato de corteza de pino natural: es higroscópico, absorbe y retiene agua. Idóneo
para animales que les guste la humedad terrestre. Estimula el comportamiento natural de
excavación del animal. Es muy decorativo.
- Sustrato de fibra de coco: Indicado para todo tipo de reptiles. Tiene las mismas
características que el sustrato de corteza de pino, ya que se hace servir cuando
necesitamos que el terrario goce de una gran cantidad de humedad contenida. Además
es digestible, por lo que es más dificultoso que produzca impactaciones intestinales.
- Arena natural del desierto: crea un ambiente desértico natural, es un buen conductor
térmico, estimula el comportamiento natural de excavación de los reptiles, es adecuado
como sustrato para la puesta, etc. Aún y así no debemos olvidar que la arena puede ser
ingerida y causar impactaciones intestinales, por lo que se recurrirá a otro tipo de
sustrato antes que a este a pesar de tratar con animales desérticos.


Sustratos artificiales o sintéticos
En cambio, si el capital que se debe invertir en adquirir un sustrato natural industrial
sobrepasa el saldo del que se dispone, o bien si se quiere ser práctico en la limpieza y el
mantenimiento podemos recurrir a los sustratos artificiales: económicos, pero nada
estéticos. Normalmente son sintéticos. Los más utilizados:
- El césped artificial: fácil de limpiar, pero muchas veces son un hábitat idóneo para el
desarrollo de parásitos y bacterias perjudiciales para los reptiles.
- Tiras de papel trinchado: es muy higiénico y barato, aunque poco estético. Es el más
utilizado por los criadores.
- Planchas de cartón con tacto rocoso: más estético que los anteriores, pero poco
adecuado por el simple hecho de ser cartón.


Recientemente se habla de sistemas de sustrato bioactivo, que provee un ambiente
donde bacterias beneficiosas compiten con las patógenas y los hongos –que crecen por
exceso de humedad y una mala ventilación- favoreciendo así un micro hábitat saludable.


                                                                                        24
Este tipo de sustrato requiere al menos 6.5 cm de profundidad y nos provee de una
buena oxigenación y retención de la humedad.

2.2.7. Material y Accesorios
Los materiales de los que está compuesto el terrario deben ser lisos, no abrasivos y no
absorbentes. Los sintéticos no porosos, como el Plexiglas®, son los más recomendados
por su ligero peso, y su fácil limpieza i desinfección, pero pueden resultar caros. La
madera también es muy popular, por su disponibilidad y su bajo coste, pero es más
pesada y retiene agua y materia orgánica. Además, la madera tratada a presión, que
contiene productos químicos, debe ser evitada por el riesgo de toxicidad. Si se usa
madera, ésta deberá ser tratada contra la corrosión del agua con tintes y poliuretano,
sellando los rincones con silicona para facilitar la limpieza. Los tanques de vidrio, son
adecuados siempre y cuando tengan una correcta ventilación. Para ello se colocan
rejillas pero nunca de hierro galvanizado, porque causan toxicidad por zinc en lagartos
que mastican el metal. Si existe una malla para la ventilación su tamaño ha de ser a
prueba de escape, en general más pequeño que el tamaño de la cabeza del animal
En cuanto a los accesorios, además de jugar un papel estético, suponen un estímulo
fisiológico de enriquecimiento ambiental para el reptil. Estos incluyen los recipientes
de la comida, y del agua, ramas para trepar, cuevas, etc. Los materiales pueden ser
naturales pero requieren una desinfección previa. En el terrario selvático tropical
también se pueden incluir plantas no tóxicas como orquídeas, bromelias, aráceas,
begonias, helechos, Ficus, etc.




                                                                                         25
2.3. Normas de mantenimiento y manejo.


Protocolo básico de manejo
Las serpientes venenosas pueden ser manipuladas de forma segura con la ayuda de
varias herramientas y técnicas diferentes. La formación y la experiencia juegan un
papel importante en la captura, manipulación, y capacidad de inmovilización. El
conocimiento práctico del comportamiento de serpientes y sus reacciones a los
estímulos ayuda en la planificación de los mejores métodos a utilizar para cada
procedimiento. Los equipos y métodos descritos aquí son técnicas probadas.
Los protocolos estrictos de manejo, la rutina de mantenimiento, y la formación del staff
técnico debe estar familiarizado con todo el personal involucrado en la manipulación de
serpientes venenosas.
El siguiente protocolo para el manejo de serpientes venenosas puede servir como base
para el establecimiento de las mejores prácticas y puede ser ampliado para incorporar
diferentes calidades de una instalación o práctica:
● Serpientes NO-venenosas deberían ser manipuladas únicamente por el personal
designado a ello.
● El staff técnico debe estar bien entrenado, bien informado, y sentirse cómodos con
los diferentes procedimientos de manipulación de serpientes venenosas.
● Siempre revisar las técnicas y procedimientos con el staff técnico.
● Configurar el espacio de trabajo con antelación y despejar el área de objetos
innecesarios u obstáculos.
● Tener todas las herramientas apropiadas disponibles.
● Nunca trabajar con serpientes venenosas cuando se tiene prisa, no se está concentrado
o se está tomando medicación que afecta al estado de alerta.
● Dos personas cualificadas deben estar siempre presentes.
A menudo se necesita asistencia, y la presencia de una segunda persona es crucial se se
produce una mordedura.
● Las jaulas deben permanecer siempre bloqueadas hasta que el personal está listo.
Anunciar siempre que la jaula está abierta, para que la atención del staff técnico se
centre única e inmediatamente en el procedimiento a realizar.
● Todas las jaulas deben estar claramente marcadas con el término “Venomous” o
“Venenoso”. Una etiqueta adicional debe indicar el nombre de la especie (nombre
común y científico), el tipo de antiveneno, y el número de animales en el contenedor.

                                                                                        26
● Incluso si una serpiente aparece muerta, utilizar unas pinzas o un gancho para
comprobar que realmente está muerta y no se mueve. La boca del espécimen debe ser
cerrada y fijada para evitar que no se produzca el contacto accidental con los colmillos.


Equipos y métodos:
Snake Hooks o ganchos

En   España     también    son   conocidos        como
“bicheros”. Es una de las herramientas más
comunes y una de las más seguras –si se usan
adecuadamente- para la manipulación y el manejo
                                                         Fig. 6. Snake hooks o ganchos.
de serpientes venenosas.
El uso más común de los ganchos es para manipular las serpientes a la hora de
trasladarlas de un recinto a un contenedor seguro que sirva de jaula o bien para colocar
el animal en el tubo de contención o en una caja de inducción anestésica para realizar
cualquier cirugía.
La elección de los ganchos se hace en función la especie de serpiente que sea
manipulada y el tamaño de la persona. Hay gran variedad de tamaños y configuraciones
(fig. 6) y pueden ser hechos en casa o comprados en proveedores especializados.
Hay que considerar dos componentes a la hora de elegir el gancho apropiado: en primer
lugar, la longitud del gancho del mango debe ser superior a la distancia de ataque de la
serpiente cuando la mano sujeta el mango. Es decir, generalmente unos dos tercios de la
longitud de la serpiente, pero puede ser más largo. La segunda es que el gancho debe ser
lo suficientemente fuerte para soportar el peso de la serpiente de ser manipulado. Los
pasos básicos al utilizar un gancho son:
● Siempre establecer el área de trabajo y equipos necesarios en primer lugar
(contenedores, jaulas, etc.), y revisar los pasos del procedimiento y las funciones de
todo el personal. Es conveniente disponer de una segunda persona capacitada provista
de un gancho para ayudar si es necesario.
● Abra siempre bolsas, contenedores y jaulas con métodos de seguridad apropiados.
● La punta del gancho se coloca inicialmente por debajo de la porción anterior de la
serpiente y se desliza caudalmente al punto medio, a su centro de gravedad aproximado,
en el lado del cuerpo del controlador (fig. 7).



                                                                                          27
                                                          ● Una vez que el gancho está
                                                          en el lugar deseado, levante la
                                                          serpiente     en      un      solo
                                                          movimiento,        elevando     la
                                                          cabeza y la cola lo suficiente
                                                          como para limpiar la superficie
                                                          del suelo (fig. 7). Esto inducirá
                                                          a la serpiente a que sostenga y
 Fig. 7. Manipulación de una Bitis gabónica con ganchos   mantenga el equilibrio. Si la
                                                          serpiente se sigue moviendo y
se desequilibra, deje suavemente al animal, y repita el proceso.
● Una vez equilibrado el animal, levantar y mover a la serpiente a la ubicación deseada.
Evitar que la cabeza y la cola toquen objetos durante la transferencia ya que esto a
menudo asusta al animal y lo induce a salir del gancho.
● Colocar con cuidado la serpiente hacia abajo y quitar el gancho. Esté preparado para
utilizar el gancho para mantener la serpiente bajo control o para seguir manipulando al
animal en el procedimiento previsto.


Para las serpientes más grandes y ágiles es aconsejable que en la base del mango haya
un mango secundario que utilizando las dos manos servirá como un punto de apoyo,
ayudará a levar la serpiente y aumentará la destreza y el control de esta. Debemos tener
presente que la posición de la empuñadura secundaria esté fuera del rango de ataque de
la serpiente (Fig. 7). Algunas serpientes requieren ser manejadas con 2 ganchos para
distribuir su peso en 2 puntos. El uso de 2 ganchos requiere más destreza que uno. Las
normas son las siguientes:
● Mantenga un gancho en cada mano y colóquelos en la parte media de la serpiente, en
el mismo lado del cuerpo que está situado el controlador.
● Mueva los ganchos a una distancia el uno del otro de forma que se dividida la
serpiente en tres partes iguales. Mientras deslizamos los ganchos hacia esos lugares,
cada gancho debe levantarse un poco para comprobar que la serpiente tiende al
equilibrio.
● Una vez colocados adecuadamente para el equilibrio, se eleva la serpiente y se
determina si es estable. Si es así, se efectúa la transferencia del animal de forma suave.
● Cuando la levante, la presión externa (fuera del punto medio de la serpiente) de los

                                                                                         28
ganchos ayudará a mantener la tensión en la serpiente y no sacar los ganchos juntos si la
serpiente pretende progresar hacia adelante.
No se debe olvidar que esta técnica requiere de práctica y cada serpiente reacciona de
forma diferente a la técnica de doble gancho.

Pinzas y fórceps
Hay disponibles varios estilos de tenazas
(fórceps) y pinzas en proveedores de
equipos de reptiles (Fig. 8). Tenazas y
pinzas no se deben utilizar como
métodos primarios de inmovilización
debido a su potencialidad de causar
                                               Fig. 8. Pinzas y fórceps.
daños al animal.
Muchas serpientes atacan o muerden las pinzas cuando se mantienen cerradas durante la
sujeción. Las pinzas sólo se deben utilizar como último recurso en caso de emergencia o
para aquellos individuos que no pueden ser manipulados de manera segura con un
gancho. El uso de pinzas no es un sustituto aceptable por la falta de formación o
habilidad con los ganchos.
La manipulación de serpientes venenosas de serpientes con ganchos, a diferencia de las
pinzas, disminuye el potencial de lesiones al animal. Los reptiles tienen un único
cóndilo occipital que aguanta su cráneo en la columna vertebral. Por eso, el manejo
brusco o la sujeción indebida puede causar lesión en la columna cuando la serpiente se
remueve o gira sobre sí misma.
También, el uso de pinzas o fórceps para la sujeción puede inducir a la serpiente a
morderse a sí misma como respuesta a ser "agarrada" por la herramienta. Esto puede
resultar en una auto-mordedura y un envenenamiento. Aunque los efectos del auto-
envenenamiento suelen ser mínimos, debido a la inmunidad, los daños mecánicos
causados por la penetración de los colmillos pueden llevar a lesiones graves.
Las pinzas de mango largo son herramientas ideales para la alimentación de
muchas especies de serpientes, para la eliminación de los elementos del recinto, la
manipulación de tapas de los envases, etc.
La longitud de la pinza siempre debe ser mayor que la distancia máxima del rango de
ataque de la serpiente.



                                                                                      29
Pinzas alargadas se utilizan para la alimentación de pequeños serpientes, la eliminación
de ectoparásitos, y la evaluación de la profundidad en animales anestesiados. Las pinzas
se fabrican en longitudes que van desde 30 a 45 cm.

Tubos de contención
Se han descrito una amplia variedad de técnicas a la hora de realizar la sujeción e
inmovilización de serpientes venenosas con muchas aplicaciones. A menudo, la
manipulación de serpientes venenosas sin inmovilización química es suficiente para un
examen inicial, administración de medicamentos y procedimientos simples, incluyendo
la eliminación de malas mudas (disecdesis), palpación, toma de muestras de sangre, y la
determinación del sexo.
La utilización de tubos de inmovilización es una técnica segura de manejo ya que
minimiza el riesgo para el controlador y se evita dañar a la serpiente. Se trata de tubos
huecos los cuales están disponibles en varios materiales y longitudes. Los pasos básicos
a la hora de utilizar el tubo son los siguientes:
● Elegir un tubo con un diámetro interior que no permita que la serpiente de la vuelta
(el diámetro menor que la longitud de la cabeza de serpiente o ligeramente más grande
que el grosor de la parte media del cuerpo de la serpiente).
● Usar un gancho y colocar la serpiente sobre una superficie lisa. Algunas especies
arbóreas se sienten más cómodas en el borde de las cubetas o contenedores. Para
pequeños y medianos especímenes se suele trabajar con un contenedor. Este por lo
general es un bote de basura u otros contenedores de techo abierto lo suficientemente
grande como para facilitar el movimiento del controlador a la hora de manipular a la
serpiente y el tubo.
En serpientes grandes como son menos inquietas se trabaja en el suelo. Debe haber una
amplia superficie libre para facilitar a los controladores maniobrar con seguridad
alrededor de la serpiente. Por eso los contenedores son preferibles, ya que limitan el
rango de movimientos y posición de la serpiente.
● Elegir un tubo que sea más largo el rango de ataque de la serpiente, o usar pinzas que
sean más largas que este rango, por tal de mantener el tubo (Fig. 4, A). Sujetar el tubo
con una mano (por lo general la mano izquierda para una persona diestra) por el final o
por el medio -si se utilizan pinzas-, y bajar lentamente el extremo abierto del tubo hacia
la serpiente de tal manera que no se induzca a la serpiente a atacar el tubo. Las



                                                                                       30
serpientes que atacan al extremo abierto del tubo pueden sufrir lesiones orales, que
afectan principalmente a las membranas mucosas que cubren los colmillos.
● Usando un gancho que sea más largo que el rango de ataque de la serpiente y
sujetándolo por encima de éste rango, con cuidado toque o enganche al animal para
llevarlo hacia dentro del tubo. Esto tiene que ser una maniobra que combine el
movimiento del tubo y de la serpiente de manera que atraigamos al animal a entrar en el
tubo. Este proceso requiere paciencia. Esto nunca debe de hacerse con prisa y siempre
se tiene que mantener el control del proceso.
● El primer objetivo es conseguir que la cabeza de la serpiente se introduzca en la boca
del tubo. Esto se debe hacer rápidamente para reducir la posibilidad de ataque por parte
de la serpiente.
● Algunas veces, mover la serpiente hacia atrás con el gancho le animará a seguir
avanzando por el tubo.
● Una vez que la serpiente empieza a entrar en el tubo, sostenga el tubo sin moverse
para no asustarla.
● Las serpientes más activas requieren que se les ayude a entrar por el tubo siguiendo
sus movimientos ondulantes.
● Una vez la serpiente esta al menos por la mitad del tubo) y sigue avanzando hacia
dentro de éste, deja el gancho a un lado y, con esa mano, rápidamente coge la serpiente
y el final del tubo en el que ha entrado. Eso previene que salga y asegura la serpiente
dentro del tubo. Utiliza la otra mano para sujetar y acompañar a la serpiente.
● Si la serpiente empieza a retroceder por el tubo, abortar el procedimiento y empezar
de nuevo.
● Una vez contenida, de inmediato revisar su estado. Tanto el tubo como la serpiente
deberían mantenerse con firmeza para evitar que la serpiente progrese hacia delante o
hacia atrás.
● Asegúrese de que no hay una abertura entre los dedos y la palma de la mano que
podría permitir que la serpiente sacara una parte de cuerpo y escapara del tubo.
● En medias y grandes serpientes, el asistente debe apoyar el cuerpo del animal una vez
que se ha inmovilizado con éxito. Esto permite que el controlador principal enfoque su
atención en asegurar la serpiente mientras sostiene el tubo con la otra mano (Fig. 4, B).
● Si el grosor de la serpiente es considerable y tiene un tamaño relativamente pequeño
de la cabeza, se inserta un tubo de menor diámetro en el extremo abierto del tubo para
evitar que la cabeza y la serpiente en sí gire alrededor.

                                                                                      31
Las serpientes no anestesiadas requieren una liberación controlada del tubo de retención
en la siguiente secuencia:
● El controlador principal coge la mitad del tubo con las pinzas, mientras mantiene el
extremo del tubo con la otra mano.
● La serpiente y el tubo se colocan en un recipiente o de nuevo en el recinto en un
ángulo vertical. El extremo del tubo se libera, liberando también la serpiente, retirando
la mano rápidamente del recipiente.
● El controlador principal y el asistente recoge los ganchos hasta su próxima
manipulación.
● Debe asegurarse el cierre del contenedor o caja, y los recipientes y contenedores
debidamente etiquetados.


Cajas de contención/sujeción
Tienen gran variedad de nombres y usos, pero tienen en común la capacidad de retener e
inmovilizar la serpiente venenosa de forma segura para llevar a cabo gran variedad de
procedimientos (por ejemplo, limpieza de la jaula, el examen visual, medición de
longitud). También cajas de sujeción también pueden utilizarse para la inducción de la
anestesia.


Cajas de cambio y cajas trampa
Las cajas de cambio y las cajas trampa se
utilizan para trasladar las serpientes de una
caja a otra (fig. 9). Se pueden colocar tanto en
el interior de la misma o adjuntas a la parte
exterior de la caja. La mayoría de las
serpientes buscan la seguridad visual y táctil
de las cajas de cambio. El tamaño de la casilla    Fig 9. Caja de cambio

sólo deberá ser lo suficientemente grande para
que la serpiente se encuentre cómodamente enrollada. Por tal de que la serpiente se
introduzca en esta caja se orienta la cabeza hacia la apertura que conecta una caja con
otra. En algunos elápidos (por ejemplo, las cobras o las mambas) se ha logrado gracias a
las técnicas de condicionamiento clásico que entren solas en dicha caja. Se trata de una
herramienta de gestión muy útil para los animales en cautiverio que requieren un
tratamiento de rutina a largo plazo.

                                                                                        32
Cajas de restricción y retención temporal
Estas cajas se utilizan para restringir el movimiento de una serpiente al realizar el
examen físico, medición, radiografías, o la administración de medicamentos
inyectables.
Consiste en una caja y un “escudo” que presiona a la serpiente contra la parte inferior de
la caja de retención. Estos dispositivos de retención se han hecho de la madera, pero las
cajas de acrílico y PVC tienen la ventaja de ser capaz de ver la serpiente de todos los
lados, incluyendo el ventral.




                                                                                       33
2.4. Trabajo de campo sección mantenimiento

Luis Riera es actualmente el encargado de mantenimiento de la sección de reptiles
de Global Aquatic Technologies, mayorista de animales exóticos a nivel Español,
más conocido como Promotora Bama. Luis tiene a sus espaldas más de 30 años de
experiencia en el campo de la herpetología, tanto en el mantenimiento y la
reproducción de todo tipo de reptiles, como de su comercialización.


1. ¿Qué significan para usted las serpientes venenosas?
Las serpientes venenosas para mí son unos animales espectaculares y bajo mi entender
de los más increíbles y bonitos que podemos encontrar hoy día.
También opino que son animales que han de ser manipulados siempre por profesionales
y con todas las medidas de seguridad necesarias, porque no hemos de olvidar que este
tipo de ofidios son muy peligrosos y de rápidas reacciones, nunca puedes estar relajado
con ellos.


2. Como encargado del mantenimiento de la sección de reptiles, ¿qué factores son
básicos a la hora de mantener este tipo de serpientes? ¿Qué tipo de accesorios
recomienda?
El mantenimiento de estos animales ha de ser lo más semejante a lo que podrían tener
en su hábitat natural.
Lógicamente no podemos mantenerlos con los mismos parámetros a todos por igual,
porque son de diferentes zonas del mundo, ya que ofidios venenosos hay en todo el
planeta.
A grandes rasgos, lo básico a la hora de mantenerlos es una temperatura adecuada, que
se puede proporcionar con esterillas calefactoras o bien por cables térmicos, así si se
tienen serpientes de diferentes zonas y hábitats, podemos regular cada uno
independientemente simulando mejor su clima. De la misma forma haremos con la
humedad y con el tipo de sustrato, no es lo mismo mantener un Crotalus atrox que una
Bitis gabónica, porque sus parámetros de humedad, temperatura y lógicamente sustrato
son muy diferentes.




                                                                                    34
3. ¿Qué opina sobre la legislación española de este tipo de animales respecto a
otros países como USA? ¿Cree que es positivo que cada comunidad autónoma
legisle sus propias leyes?
El futuro de estos animales en cautividad se ha de regular de una manera coherente, hoy
por hoy hay un vacío legal enorme, se pueden conseguir animales de un extremado
riesgo simplemente visitando foros de herpetología a través de sus anuncios de venta.
Realmente es lamentable que cualquier persona pueda adquirir un ofidio venenoso, es
como permitir el libre acceso a las armas a cualquier ciudadano.
También se deberían redactar una serie de leyes en las que todas las autonomías de
España demanden los mismos requisitos en el caso que autoricen su tenencia, no como
ocurre actualmente, que de una comunidad a otra varia y si no puedes adquirir un
animal en Cataluña, puedes hacerlo en la comunidad Valenciana.


Muchas gracias por su paciencia y su amabilidad.




                                                                                    35
3. REPRODUCCIÓN EN CAUTIVIDAD


3.1. Generalidades


   -   Dimorfismo sexual y órganos reproductores:


          o Macho:
              Presentan dos hemipenes situados en la base de la cola, a nivel ventral,
              permaneciendo invaginados en unos sacos o estuches. Sólo se utiliza uno
              de los hemipenes durante la cópula, el cual se evagina (posee una
              estructura cavernosa que se llena de sangre, produciendo su eversión y
              evaginación) de su saco y se introduce en la cloaca de la hembra. Por la
              cara externa de los hemipenes se localiza la fisura espermática, por
              donde el semen avanza hasta ser eyaculado. Al alojar a los hemipenes, la
              base de la cola del macho suele ser más ancha y aplanada que la de la
              hembra.
              Los testículos son redondeados, localizados intrabdominalmente,
              craneales a los riñones, cerca del páncreas, de la vesícula biliar y del
              bazo. El testículo derecho está situado más cranealmente que el
              izquierdo. Durante la época de reproducción, aumentan de tamaño. De
              los testículos salen, caudalmente, los conductos de Wolffian, que
              transportan el esperma hasta los hemipenes.




          o Hembra:
              Los ovarios se localizan cerca del páncreas, cranealmente a los riñones.
              También el ovario derecho se encuentra en una situación más craneal
              respecto al izquierdo. La estructura suspensora que mantiene a los
              ovarios es el mesovario.


   -   Madurez sexual:


El crecimiento depende de cada especie, del clima, del alimente disponible y de cada
individuo. Las serpientes tropicales pueden mantenerse creciendo durante el transcurso

                                                                                   36
del año. Las serpientes de zonas templadas crecen más durante el verano. El crecimiento
no se detiene completamente y puede durar prácticamente toda la vida. La madurez
sexual se alcanza más rápido para serpientes de clima cálido, aproximadamente entre el
primer y segundo año de vida. Para las serpientes de clima templado, la madurez sexual
se da entre el segundo y sexto año de vida. Las serpientes más longevas pertenecen a
Boidae y Elapidae pudiendo llegar a los 29-30 años.


   -   Apareamiento:


Existen factores tales como el clima, las estaciones del año, la temperatura y la
disponibilidad del alimente que influyen en el ciclo biológico. En zonas templadas
muchas especies se reproducen en primavera, cuando la cantidad de alimento es mayor.
En las especies tropicales la actividad reproductiva se realiza en la época de mayor
humedad o lluviosa.
En los vipéridos, las hembras liberan feromonas a través de la piel o por glándulas
anales, las cuales permiten la localización de éstas por los machos, ayudados por la
visión y quimiorreceptores, la hembra está receptiva ocurre la monta. En colúbridos, el
macho puede morder el tronco de la hembra y ésta se coloca en una posición cloacal de
la hembra, lo que facilita la intromisión del hemipene. Las cópulas pueden ser de
minutos o llegar a durar 29 horas como en el caso de Crotalus atrox.
Después de la cópula, los espermatozoides pueden ser retenidos por las hembras en
receptáculos seminales por períodos variables. En serpientes puede ser desde 11 días
hasta 6 años. La mayoría de las serpientes son ovíparas, y las ovovivíparas y vivíparas
son menos frecuentes (en Boidea, Elapidae, Colubridea, Crotalidae y Viperidae). En
este caso hay un intercambio entre el embrión y la circulación sanguínea de la madre.


   -   Desove o puestas:


Los huevos o crías son depositados en cavidades de troncos, en el suelo o entre hojas
caídas, donde terminan de incubarse a temperatura ambiente. El cuidado de la prole por
los adultos no es frecuente, aunque la especie Python molurus es capaz de incubar sus
huevos manteniendo la temperatura corporal por encima de la ambiental, por medio de
contracciones musculares.


                                                                                        37
La cantidad de huevos varía, en serpientes ovíparas de 1 hasta 100 huevos.
Normalmente el tamaño de las nidadas fluctúa entre 2 y 16 crías. El tiempo de
incubación varía de pocos días hasta 2 meses y la temperatura influye, puesto que al ser
más caliente se desarrollan más rápidamente.


   -   Nacimiento-Parto:


En el caso de las ovíparas, las crías a punto de salir del huevo tienen un diente terminal
o diente del huevo, que lo emplean para romperlo y salir de él.
Como se ha comentado anteriormente, también existen serpientes ovovivíparas y
vivíparas, las cuales como indica su nombre, nacen directamente de su madre. Los
partos de la mayoría de éstas especies suelen durar entre 1-5 horas, y el número de crías
depende mucho de la especie y el individuo en concreto.


   -   Problemas reproductivos:


Prolapso de cloaca o pene: causado por retención de huevos, fecaloma, sobreinfestación
parasitaria o problema de inervación. La corrección puede ser manual o quirúrgica. A
veces es necesaria la amputación de pene.
Retención de huevos: Producido por caquexia, carencias nutricionales, desórdenes
hormonales, infecciones, cálculos urinarios o huevos deformes. El tratamiento básico es
la aplicación de oxitocina (5 – 30 UI/Kg) o Calcio (500mg/Kg.). Si el tratamiento no
invasivo no funciona se opta por una celiotomía.




                                                                                       38
3.2. Proceso reproductivo por especies


FAMILIA ELAPIDAE


Subfamilia Elapinae
MAMBAS: género Dendroaspis
Son ovíparas. Los huevos, en número 9-14, miden entre 60-80mm de largo un diámetro
de 35mm. Dan nacimiento a jóvenes, de 40 a 50cm de largo, cuyo crecimiento es muy
rápido alimentándose de ratones y ratas pequeñas.
En cautividad se describió que unas mambas verdes copularon durante 15 a 17 horas a
mediados de abril y a los 99 días la hembra puso cinco huevos con unas medidas de 6,8-
8,7 x 2,8-3,0 cm y tres más pequeños y estériles. El tiempo de incubación fue de 85
días, donde solo eclosionaron dos de los huevos. Los individuos hacían unos 40cm de
longitud al nacer. A los 5 días de vida ya comenzaron a comer pinkies (crías de ratón).


COBRAS: Género Naja
El grupo de las cobras, está muy extendido en la herpetocultura, y son unas de las
serpientes venenosas que más se mantienen. La cobra asiática (Naja naja) suele
aparearse en cautividad durante los meses de noviembre y diciembre. La media de cada
puesta es de unos 16 huevos, aunque el número oscila entre 9 y 32 huevos dependiendo
del estado de cada animal. El período de gestación de los huevos va desde 38 a 103 días,
y lo más frecuente es que al cabo de un mes de la primera puesta realice una segunda.
Los huevos son de 4,5-5,5 x 2,2-2,6 cm y llegan a pesar unos 20 gramos. A una
temperatura de 21-30ºC los huevos eclosionan en 43-93 días. Mudan por primera vez a
los 15-27 días, por entonces, algunos individuos ya han realizado su primera comida,
que pueden ser ratones de unos 2-3,5 gramos o ranas pequeñas.
La Cobra negra y blanca (Naja melanoleuca), en el terrario puede llegar a vivir mucho
tiempo. Tras un enfrentamiento entre los machos y un prolongado apareamiento,
depositan de 11 a 13 huevos en octubre y mayo. Las pequeñas cobras nacen después de
78 a 104 días y miden de 35 a 40 cm. Mudan por primera vez al cabo de ocho a diez
días y después ya comen ranas. Posteriormente empezaran a comer ratones destetados.
Si no se dispone de ranas, habrá que alimentarlas a la fuerza a comer pinkies hasta que
coman ratón por sí solas.


                                                                                        39
La Cobra del Cabo (Naja nívea) comienza a aparearse a mediados de marzo. Un grupo
de cobras en mayo y junio pusieron, ocho y dice huevos respectivamente, algunos de los
cuales resultaron estériles. Las crías nacieron después de 59 a 60 días a una temperatura
de 29 a 30 ºC; algunas de ellas comieron pinkies, pero otras hubo que alimentarlas a la
fuerza.


Subfamilia Bungarinae
Género Ophiophagus
No existe mucho éxito en la reproducción en terrarios de estas especies debido a sus
requerimientos alimentarios. Se ha descrito una hembra que hizo un nido en un terrario
de un zoológico y llegó a poner unos 41 huevos. Estos eclosionaron a las 10 semanas de
incubación.


Otros elápidos
El Taipán (Oxyuranus scutellatus) se ha conseguido reproducir durante varias
generaciones en un zoológico de Australia.

También se ha conseguido reproducir en cautividad Acanthophis antarcticus, pero pero
principalmente en su país de origen, Australia.

La Cobra acuática (Boulengerina annulata) pertenece al único género acuático de la
familia (si se excluye a las serpientes marinas del género Laticauda, consideradas como
elápidos por muchos autores), ésta también se ha reproducido con éxito en cautividad.

Se alimenta principalmente a base de peces y anfibios. Pusieron 22 huevos de 5,2-6,4
cm x 3,1-3,5 cm y un peso de 3,8 gramos de los que nacieron 15 crías al cabo de 78ª 84
días de incubación. Las recién nacidas medían de 31 a 43 cm de longitud. Se alimentan
de pequeños peces (Gambusia) y pinkies.

SERPIENTES DE CORAL Género Micrurus y Micruroides
Son especies ovíparas cuyas hembras ponen de 2-10 huevos después de la época de
verano. Éstos tienen cáscara blanca y de textura apergaminada. El período de
incubación puede ser de alrededor de 80 días, siendo influenciado por factores como la
temperatura y otras condiciones climáticas.

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El olfato guía a los machos hacia las hembras de su misma especie. Éstas exhalan en la
época del celo feromonas que contribuyen a mantener el apareamiento intraespecífico,
evitando la cópula con representantes de otras de similar apariencia. Una vez fecundada,
la hembra deposita sus huevos en huecos del suelo protegidos por piedras, cavidades de
troncos o incluso dentro de los hormigueros de hormigas negras.

Subfamilia Hidrophinae
Son ovovivíparos, manteniendo las crías vivas, en un huevo sin cáscara, dentro de su
cuerpo hasta el momento del nacimiento. No hay información sobre su reproducción en
cautividad.


FAMILIA VIPERIDAE


Subfamília Viperinae
Género Bitis
Bitis arietans se reproduce con frecuencia. Sus partos suelen ser muy numerosos, con
cifras de 157 crías -es probable que ostente el récord de todas las serpientes- y no
siempre es posible conseguir dar las crías a aficionados con la necesaria experiencia.
Esto ha llevado a que algunos aficionados a estas serpientes lleguen a la conclusión de
que es mejor esterilizarlas quirúrgicamente. Si se les mantiene en grupos pueden
observarse unos impresionantes enfrentamientos rituales. Alcanzan la madurez sexual
bastante pronto. Por ejemplo, unas Bitis arietans de 14 meses de edad se aparearon en
junio y en los meses de enero y febrero del año siguiente, la hembra expulso unos pocos
huevos no fecundados y dio a luz una camada de crías que medían de 12 a 19 cm y
pesaban de 5 a 15 gramos; nacían a intervalos de 2 a 20 minutos. En cuanto se liberaban
del corion, las pequeñas Bitis se enterraban en el sustrato y mudaban sin problema.


En el terrario, las víboras de Gabón (Bitis gabonica) suelen parir a partir de marzo. A
veces también se ha conseguido la reproducción de dos miembros más pequeños de este
mismo género, Bitis caudalis y Bitis atropos de Sudáfrica. Las diminutas crías de Bitis
caudalis (9,8 cm) tuvieron que ser alimentadas a la fuerza durante seis meses con
finísimas tiras de corazón de buey antes de que alcanzasen los 22 cm de longitud y
fuesen capaces de comer pinkies. Las crías de Bitis atropos pronto empiezan a comer



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ratones recién nacidos y trozos de ratones, especialmente si se les mantiene en pequeños
terrarios individuales.


Para la reproducción de la víbora cornuda de la arena (Cereastes cereastes) es
conveniente que hiberne varios meses a 10-15 ºC con las luces del terrario apagadas.
Entre julio y agosto deposite de 13 a 16 huevos ovalados bastante húmedos durante la
incubación. Al cabo de 45-48 días nacen unas crías de 16-18 cm de longitud que al
principio es frecuente que hayan de ser alimentados a la fuerza con ratones recién
nacidos.


También se ha conseguido la reproducción en cautividad de la víbora cornuda de Persia
(Pseudocerastes persicus). Sin embargo, antes de reproducirla hubo que reunir
información acerca de sus costumbres en la naturaleza. Para lograr que se apareasen
hubo que bajar gradualmente la temperatura desde 30 ºC (octubre) hasta 25 ºC
(diciembre) a la vez que se disminuía el número de horas de luz (en diciembre: cinco
horas de luz a 20 ºC y una temporada nocturna de 15 ºC) y luego volver a incrementar la
iluminación de enero a marza hasta alcanzar las diez horas de luz y una temperatura de
27-30ºC. Tras un periodo de gestación de 107 días (de abril a junio) pusieron quince
huevos. Al cabo de tan sólo 17 días nacieron seis crías de 15-16 cm de longitud. Al no
aceptar los grillos y pinkies, se optó por alimentarlos a la fuerza una vez por semana con
tiras de corazón de buey.


Atheris squamiger es una víbora de coloración verdosa propia de las regiones de
arbustos de África central y occidental. Se ha reproducido varias veces en cautividad. Se
aparearon en agosto a la edad de 16 meses y parieron en marzo y abril del año siguiente,
dando a luz unas crías con una coloración muy variada que medían unos 23 cm y
pesaban unos 5 gramos. Por regla general, los jóvenes pueden ser alimentados
fácilmente a base de pequeños peces y ratones.


Las víboras nocturnas africanas (Causus) se alimentan principalmente a base de sapos y
ranas y difícilmente se pueden acostumbrar a otro tipo de presas. Causus rhombeatus es
muy productiva y en numerosas ocasiones se ha conseguido descendencia en el terrario.
Es una especie muy robusta y adaptable.


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Género Vipera
La víbora áspid del sureste de Europa (Vipera aspis), la víbora cornuda de oriente
medio y sureste de Europa (Vipera ammodytes) y la víbora hocicuda de la península
Ibérica y noreste de África (Vipera latastei), tienen el hocico arremangado hacia arriba.
De todas estas especies, la más recomendable y fácil de cuidar es, sin lugar a dudas, la
víbora cornuda. A causa de un generalizado error acerca de sus biotipos originarios,
todavía    hay quienes la llaman “víbora de la arena”. Es más fácil conseguir su
reproducción si se mantienen grupos en los que haya varios machos- cuando varios
machos en celo localizan una hembra sexualmente madura de su especie, suelen
enzarzarse en combates rituales. En el terrario suelen copular de abril a mayo, en
función de la época en que hayan hibernado. El periodo de gestación no se conoce de
forma precisa, pero en cautividad se han documentado periodos de 80 a 85 días, e
incluso de 113 días. Vipera ammodytes suele dar a luz a sus crías a finales de octubre.
Pueden llegar a parir hasta 20 crías a la vez, pero lo habitual es que en el terrario nazcan
de cinco a nueve, normalmente en horas diurnas. Las víboras recién nacidas se liberan
de la membrana que les rodea perforándola con movimientos de la cabeza y luego se
desplazan rápidamente a lo largo de los vidrios del terrario en busca de un refugio. El
cuerno externo de su hocico permanece plano durante los primeros días y se levanta
primero a los jóvenes más robustos. Los sexos se pueden diferenciar ya en los
individuos muy jóvenes: los machos suelen ser de color gris con un dibujo muy
marcado, mientras que las hembras son marrones y con unos dibujos menos destacados.
Los recién nacidos miden de 14 a 26 cm y pesan entre 4,5 y 10,5 gramos.


La frecuencia con que se ha obtenido la reproducción de la víbora áspid en el terrario
contradice a aquellos que afirman que es menos apropiada para el terrario que otras
especies de su género. En cautividad también se han obtenido híbridos con Vipera
ammodytes. Vipera aspis es fácil de alimentar a base de ratones, tanto vivos como
muertos. Esta especie también se ha reproducido muchas veces en cautividad. Parece ser
que los jóvenes son fáciles de cuidar a base de alimentarlos con lagartijas, saltamontes y
pinkies.


La Víbora Europea (Vipera berus) durante el periodo de apareamiento, que se inicia
poco después de salir de la hibernación, suele tener enfrentamientos entre machos que
acaban de mudar. La cópula se produce en mayo y puede prolongarse hasta dos horas y

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media. Mediante observaciones de campo se ha comprobado que el período de
gestación de la víbora europea dura de dos meses y medio a cuatro mese y medio en
función de las condiciones climatológicas. En el terrario, una hembra dio a luz nueve
crías a los 82 días de una cópula observada. Las crías nacieron de una en una a
intervalos de cinco a ocho minutos. Tras unos pocos segundos de inmovilidad, las
víboras recién nacidas penetraron el corion con sus cabezas. Durante algún tiempo
conservaron restos secos del saco vitelino pegados a sus cuerpos. Lo normal es que
nazcan de siete a diez pequeñas víboras por parto, pero este número puede llegar a
oscilar entre 4 y 20. Las recién nacidas medían de 14 a 21 cm, con un peso de 4 gramos.


La víbora del Cáucaso (Vipera kaznakovi) se ha reproducido muchas veces en los
terrario. Las crías se alimentaban a base de grillos, saltamontes, pinkies y por supuesto
de pequeñas ranas y lagartijas. Al cabo de unas cuantas mudas cambiaron la coloración
juvenil marrón por el hermoso dibujo de los adultos.
También se ha logrado la reproducción en cautividad de Vipera ursini. Los recién
nacidos son muy pequeños (12 a 13 cm) y se alimentan preferentemente a base de
grillos y pequeños saltamontes, aunque también aceptan cucarachas y trozos de ratón.


Género Daboia
Incluidas antiguamente en el género Vipera, actualmente se suele aceptar que las
víboras orientales pertenecen al género Daboia. Es interesante destacar que la mayoría
de las subespecies de la víbora de Oriente (Daboia lebetina) ponen huevos, mientras
que Daboia lebetina obtusa y la subespecie nominal son vivíparas en ciertas regiones.
La víbora de Oriente suele ser muy resistente en el terrario y no hay problemas para
alimentarla. Su reproducción no es muy sencilla, pero se ha conseguido en muchas
ocasiones. Las crías se pueden alimentar con pinkies aunque a veces hay que recurrir a
la alimentación forzada. A la víbora del Atlas (Daboia mauretanica), al igual que a la
de Oriente, les gusta mucho el calor. Se sabe del caso de una hembra que fue capturada
en estado de gestación, puso 21 huevos. Las crías median de 25 a 28 cm al nacer y
empezaron a comer ratones por su cuenta después de mudar por primera vez a los
nueve-diez días.


La víbora Otomana (Daboia xanthina) se reproduce tras la hibernación y después de
alcanzar temperaturas ambientales de 26-30 ºC. Después de 84 días nacieron diez

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ejemplares. Abandonaron sus membranas tras unos minutos, pero sólo mudaron entre 7
y 10 días más tarde. Su tamaño medio fue de 20 cm y aceptaron el alimento
inmediatamente tras la muda.


La víbora de Palestina (Daboia palestinae) se ha reproducido muchas veces en
cautividad. Una de ellas desovó en el terrario 35 días después del apareamiento. Las
crías, que nacieron al cabo de unos 60 días, se alimentaron desde el principio a base de
pinkies.


La víbora de Russell (Daboia russelli) está ampliamente distribuida por el sur de Asia y
su fortaleza y hermosos dibujos hacen que sea muy popular entre los incondicionales de
las serpientes venenosas. Necesita una temperatura de 27-32 ºC durante el día y de 22-
24 ºC por la noche. A las víboras de Russell les gusta que se las rocíe regularmente con
agua tibia. Esta serpiente se ha reproducido muchas veces en cautividad. Por ejemplo,
en un caso nacieron 27 y 29 crían en junio y julio respectivamente; mudaron y
empezaron a comer inmediatamente pinkies. Comieron muy bien y al cabo de un año ya
median de 90 a 110 cm de longitud.


Género Echis
Tanto Echis carinatus como Echis coloratus se han reproducido frecuentemente en
cautividad. En una ocasión se produjo un cruce entre ambas especies; se aparearon
repetidamente a principios de mayo y durante un periodo de cinco días. La hembra puso
14 huevos al cabo de cuatro meses. La incubación de la puesta se efectuó sobre musgos
de esfagnos a una temperatura de 26-32 ºC y con una humedad relativa de 80-90%. Los
huevos eclosionaron al cabo de 39 a 43 días y las nueve crías que nacieron estaban
perfectamente sanas, medían unos 15 cm de longitud y pesaban solamente 1,1 gramos
cada una. Mudaron por primera vez al cabo de siete a nueve días y, dado que no hacían
caso a los grillos, saltamontes y larvas que se les ofrecían, no hubo más remedio que
forzarlas a comer con tiras de corazón de buey. Las crías puras de Echis carinatus
obtenidas por otros aficionados a veces no han tenido problemas para alimentarse por su
cuenta con pinkies y especialmente lagartijas.




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Subfamilia Crotalinae
Género Agkistrodon
Las Agkistrodon contortrix se aparean tras hibernar durante varios mese a temperaturas
de 3 a 8ºC. Los machos se vuelven muy agresivos durante esa época. Tienen un periodo
de gestación de 105 a 110 días que finaliza con el alumbramiento de cuatro a seis crías,
a veces pueden nacer hasta 17. Al principio se quedan totalmente inmóviles (pueden
pasar así desde unos minutas hasta varias horas) y envueltas dos o tres veces con el
corion hasta que empiezan a sacudirse para liberarse. Al nacer miden de 20 a 22 cm. No
todas las crías aceptan ratones recién nacidos, por lo que si no se tienen ranas a mano,
habrá que alimentarlas a la fuerza dos o tres veces hasta que empiecen a comer por sí
solas.


Los mocasines de agua (Agkistrodon piscivorus) se reproducen frecuentemente en los
terrarios y durante muchas generaciones. Tras un periodo de gestación de cuatro a seis
meses (existen datos acerca de un caso en que la gestación duró 11 meses), nacen de
cinco a ocho crías, o incluso más. Tienen unas franjas de color amarillo-marrón o casi
negra en los adultos. Al nacer suelen medir de 25 a 30 cm de longitud. Mudan por
primera vez a los ocho días y luego (a veces incluso antes) empiezan a comer pequeños
peces, pinkies y ranas muy pequeñas. Sin embargo, a veces la cosa no es tan fácil, y hay
que dedicarles mucha paciencia durante sus primeras semanas de vida.


Agkistrodon halys es propia de Siberia y Asia oriental, esta especie no se ha reproducido
mucho en terrario. Si se mantiene en un terrario seco, con un recipiente de agua y se las
deja hibernar a temperaturas muy bajas, se aparearan a finales de marzo o abril. A
finales de agosto y principios de septiembre nacen de tres a diez crías de 13 a 19 cm de
longitud que pesan unos 5 gramos. Si se niegan a comer grillos y no se dispone de
lagartijas, habrá que alimentarlas a la fuerza durante varios meses hasta que coman por
si solas ratones.


La mocasín malaya (Calloselasma rhodostoma) es la mocasín que más le gusta el calor.
Esta serpiente, junto con Deinagkistrodon acutus, son las únicas especies ovíparas del
grupo Agkistrodon y realizan puestas de 10 a 35 huevos. Las crías nacen tras una
incubación de 35 a 60 días a una temperatura de 28 a 32ºC. Si no se dispone de ranas,


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Género Bothrops
Una pareja de Bothrops schlegeli mantenida de 18 a 29 ºC de abril a noviembre y de 18
a 24 ºC de noviembre a marzo, copuló en febrero y al cabo de 164 días la hembra parió
20 crías y expulsó también cuatro huevos no fertilizados. En otro parto en el que
también nacieron 20 pequeñas serpientes que solamente medían de 10 a 15 cm y
pesaban de 1 a 1,5 gramos, algunas eran amarillentas y otras verdosas. Estas serpientes
mudaron al cabo de cinco a siete días y empezaron a capturar ranas arborícolas (Hyla
cinerea). En los siguientes meses continuaron alimentándose a base de ranas y lagartijas
a las que atraían con los movimientos del extremo amarillo de su cola.
En otro grupo de Bothrops schlegeli los apareamientos tuvieron lugar en abril y a
principios de mayo. Después de una gestación de 250 a 253 días nacieron un total de 46
crías que medían de 15,5 a 17,7 cm de longitud y pesaban una media de 3,3 gramos.
Mudaron por primera vez al cabo de dos semanas largas y al principio todas las crías
tuvieron que ser alimentadas a la fuerza con tiras de carne hasta que al cabo de tres
meses ya habían crecido lo suficiente como para poder comer ratones de un día de edad.
Para conseguirlo, en cada caso había que aguantar con unas pinzas a un ratón recién
nacido y colocarlo delante de la serpiente golpeándola suavemente en el morro hasta
que se decidiese a morderlo. Entonces, se colocaba el ratón en la boca de la serpiente y,
si nada ni nadie la molestaba, lo engullía.
Este método exige mucho tiempo y mucha paciencia, pero siempre es mejor que el
estrés al que se somete a las serpientes con la alimentación forzada.


La jararacussú (Bothrops jararacussu) vive cerca del agua, por lo que en su terrario de
ambiente selvático necesitará también un gran recipiente con agua. Estas serpientes, que
pueden alcanzar una longitud de hasta más de 1,5 metros, se alimentas de ratas y
ratones. En dos partos ocurridos en cautividad, nacieron 40 y 37 crías de unos 28 cm de
longitud. Eran bastante agresivas y al principio comían lagartijas; luego, ratones
jóvenes. Su crecimiento fue muy lento y a la edad de tres años solo habían alcanzado
una longitud de 64 a 75 cm.




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La urutú (Bothrops alternatus) y la ferdelance (Bothrops atrox), así como Bothrops
nasutus y la jararacá pintada (Bothrops neuwiedi), son especies más terrestres y que se
reproducen en ocasionalmente en cautividad. Necesitan un terrario con buena
calefacción y posibilidad de bañarse y se alimentan a base de pequeños mamíferos y a
veces de pollitos. Doce urutús recién nacidas medían unos 20 cm de longitud y pesaban
15 gramos. Algunas de ellas rechazaron las ranas y lagartijas que se les ofrecieron y
tuvieron que ser alimentadas a la fuerza. Una Bothrops nasutus que se había apareado
en abril, dio a luz 12 crías de unos 15 cm de longitud; al principio hubo que alimentarlas
a la fuerza con cabezas de ratones de un día.


Género Crotalus
Después de la hibernación, la mayoría de las especies hacen unas impresionantes
exhibiciones de combates rituales y se aparean a continuación. Todas las serpientes de
cascabel son vivíparas y traen al mundo, en función de su talla, de 6 a 60 crías que
normalmente se alimentan sin problemas a base de pinkies.

Las crías de Crotalus adamanteus, por ejemplo, a los pocos días de nacer ya comen
ratones de tamaño medio.

La serpiente de cascabel de los trópicos (Crotalus durissus) tiene un periodo de
gestación extraordinariamente largo que dura de 240 a 270 días. La subespecie Crotalus
durissus terrifiicus se ha reproducido muchas veces en cautividad. Las pequeñas
cascabeles de un día de edad miden de 20 a 35 cm de longitud; y se desarrollan muy
deprisa, ya que a los tres años de edad, uno de los ejemplares nacidos en cautividad ya
era sexualmente maduro y media 127 cm. Si se mantienen juntas varias especies y
subespecies de serpientes de cascabel, no es raro que se produzcan hibridaciones.
Crotalus atrox proviene de regiones de Norteamérica en las cuales, las estaciones son
muy marcadas, en cautividad deberemos imitar esto. En Texas, un lugar muy habitado
por Crotalus atrox, en invierno hace mucho frio y en verano mucho calor, y siempre
con humedad bastante baja, esto lo imitaremos así:

Primavera - verano - otoño = se les colocará una bombilla de calor 12h diarias, y lo
mantenemos en una habitación a mas de 20ºC.




                                                                                       48
Durante el invierno (con 8 semanas basta) = se les proporcionará una caja de madera
con hojarasca seca y lo mantenemos alrededor de los 10ºC, si baja mas no importa es
bueno, pero que no suba de 10ºC.


En primavera sacamos a las serpientes e introducimos la hembra y el macho en el
terrario del macho. Se dejan juntas un mes, después se separan. La hembra es
ovovivípara, buscará el calor y a medidos del verano dará a luz las pequeñas atrox, que
serán separadas lo antes posible y alojadas individualmente.


Género Lachesis
Las bushmasters son ovíparas y producen alrededor de una docena de huevos por
nidada. La hembra permanece con sus huevos durante la incubación y suele defender el
nido de intrusos. Las crías tienen un tamaño promedio de 30 cm de largo y son más
coloridos que los adultos. Se piensa que Lachesis es único entre los crótalos del Nuevo
Mundo en poner huevos en lugar de dar a luz a crías vivas. Sin embargo, algunos
informes sugieren que la especie Bothrocophias colombianus en Colombia es la única
otra especie ovípara entre las víboras de foseta americanas


Género Sistrurus
Todas las especies de este género son vivíparas pero generalmente no suelen dar a luz
más de 10 crías por parto. Los jóvenes de todas las especies miden de 15 a 24 cm al
nacer   y    después    de   la     primera   muda    empiezan     a   comer     pinkies.
La massasauga (Sistrurus catenatus) se alimenta en el terrario a base de ratones y ratas
y si se le permite hibernar algunos meses a temperaturas bajas, luego estará predispuesta
a reproducirse.
Sistrurus ravus necesita una temperatura diurna de 20 a 30 ºC e hiberna a temperaturas
algo más bajas.
La serpiente de cascabel enana de las llanuras (Sistrurus miliarius) también se ha
reproducido en estas condiciones.


Género Trimeresurus
Para inducir a reproducirse a la víbora verde de labios blancos (Trimeresurus
albolabris), conviene mantener a estas serpientes en verano a una temperatura de 27 ºC
durante el día y a 22ºC durante la noche, y en invierno a 20ºC. En el terrario se

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obtuvieron en una ocasión partos de 17 a 21 crías y no todas parecían querer abandonar
voluntariamente el corion que las envolvía. Medían unos 12 cm de longitud, pesaban 5
gramos y eran del mismo color verde que sus progenitores. Conviene alojarlas en
recipientes de plástico individuales para evitar posibles actos de canibalismo. Si se les
aguanta los ratones recién nacidos con unas pinzas, los detectan y los comen antes que
si se les dejan en el suelo. Caso de tener que recurrir a la alimentación forzada , se
emplearían tiras de corazón de buey enriquecidas con vitaminas y espolvoreadas con
calcio.
La víbora verde de Pope (Trimeresurus popeorum), es una serpiente arborícola de color
verde claro u oliváceo. Una hembra mantenida en cautividad dio a luz a 17 crías de una
longitud de 20 cm y 6 gramos de peso. La madre media 80 cm y antes de la gestación
pesaba 355 gramos; después de parir y a pesar de que había continuado comiendo
durante todo el proceso de gestación, pesaba solamente 190 gramos. Al cabo de dos
semanas y después de mudar por primera vez, todas las jóvenes serpientes comieron
ratones recién nacidos sin que hubiese que intervenir para nada.
La víbora de los manglares (Trimeresurus purpureomaculatus) habita en los bosques de
manglares de la costa; en el terrario se la puede mantener junto a          Trimeresurus
albolabris). Sin necesidad de ninguna estimulación externa, las hembras de víbora de
los manglares paren de 3 a 11 crías que mides de 17 a 20 cm de longitud. Sin embargo,
no todas son viables. Es frecuente que haya que alimentaras a la fuerza con ratones
recién nacidos. Una serpiente que empezó a comer por su cuenta desde el principio,
duplicó su tamaño en un año.
La habu de Okinawa (Trimeresurus okinavensis) y la himehabu (Trimeresurus
flavoviridis) han sido reproducidas en terrarios en su Japón natal. Es importante destacar
que esta última especie puede parir vivas a sus crías o poner huevos que solamente
necesitan unos pocos días de incubación.




                                                                                       50
3.3. Trabajo de campo sección reproducción
Jorge Barros es cuidador de serpientes venenosas en Florida (USA) desde hace
varios años, pertenece a la Asociación de Cuidadores de Serpientes Venenosas de
este mismo estado. A través de Internet se contactó con él para realizarle una serie
de preguntas sobre el manejo de estas especies, así como de la seguridad y los
posibles riesgos económicos y legales que envuelve este trabajo.


Buenos días Jorge Barros, primero de todo, ¿cuál es su experiencia con serpientes
venenosas?
Personalmente, llevo manteniendo y dedicándome a estas especies durante varios años y
por ahora me veo con la finalidad de ayudar a la gente a tomar buenas decisiones al
adentrarse en este mundo, y por supuesto lo hago dentro de mi humilde experiencia.


¿Qué factores hay que tener en cuenta a la hora de iniciarse en este mundo?
Muchas personas se preguntan con cuál empezar, cuál es la mejor opción, y se deja
llevar por comentarios, consejos, modas, y muchas veces se adquieren las que mejor se
ajustan al presupuesto, dejando de lado factores importantes como la pericia o
experiencia que pueda tener o no a la hora de manejarla, a la hora de mantenerla en
optimas condiciones, la disponibilidad de sueros en su zona, etc.


¿Cuál es la mejor manera de empezar con estas especies en cuanto al manejo?
La mejor manera de empezar es manejando una gran cantidad de serpientes NO-
venenosas que impliquen un considerable riesgo de terminar mordido y que
definitivamente agudizan tu capacidad de dirección y reacción ante otras más
peligrosas.
Hay que tomar en consideración diferentes factores, no sólo la agresividad, también
debemos considerar animales que tengan similar comportamiento, mismos hábitat, y
una gran semejanza corporal, o sea que tengan las mismas formas y por ende
movimientos y reacciones muy similares.
En la asociación de cuidadores de la Florida USA es común ver estudiantes que se
preparan para la manipulación de venenosas entubar fácilmente un ejemplar venenoso,
pero verlos pelear minutos con una serpiente de agua “watersnake”. Yo tuve la
oportunidad de ver a dos muchachos manipular exitosamente dos Bothriechis lateralis
y terminar todos mordidos por una ratsnake asiática que ahora no recuerdo bien cual

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fue. Además de que hay que tomar muy en cuenta que con los años los animales se van
habituando a la manipulación de sus dueños y muchas veces las reacciones de ellos nos
pueden sorprender, hay muchas personas que mantienen venenosas hace muchos años
pero fueron mordidos tratando de hacer pining (sujetar por la cabeza) a un ejemplar
aparentemente fácil en un bosque, o comprando un ejemplar que resulto siendo de
captura, por lo que la atención debe ser máxima y el proceso de aprendizaje y les será
difícil de manejar; esta ultima técnica es la más usada con ellas, siempre usando un
gancho para controlar la cabeza, ya que la fuerza que tiene al tratar de embestir podría
hacerla      zafar        fácilmente     de     nuestra     mano         en   la    cola.


Además      de      los   ganchos,     ¿qué   otro   instrumental   es    imprescindible?
Los guantes. Son de mucha ayuda como apoyo para manejar un animal rebelde
acompañados de los ganchos, aunque también he visto mucho inexperto pensando que
puede realizar un pining con ellos y eso está muy lejos de ser verdad, debido a la
pérdida notoria de sensibilidad y capacidad motora de nuestras manos por lo cual yo los
aconsejo ampliamente “SOLO” como apoyo para otras actividades, pero no para un
pining.


En cuanto al terrario, ¿nos podría explicar los elementos más importantes que
deben colocarse, tanto en relación con el animal como con la seguridad?
El terrario debe albergar un ser vivo y por ende debe poder mantener las condiciones
optimas para que el animal a mantener pueda llevar una vida plena dentro de él, pero
también, como bien has comentado, debe satisfacer todas las medidas de seguridad que
conlleva mantener estos animales potencialmente mortales, esa seguridad es hacia el
animal, hacia nosotros y hacia terceras personas.
Hay terrarios con puertas colocadas arriba y otras colocadas al frente, en ese aspecto
hay muchas opiniones y yo particularmente no tengo preferencia, mis terrarios las
tienen en frente.
La jaula en si debe ser hecha con materiales resistentes, a prueba de golpes, de humedad
y de cualquier accidente que pueda ocurrir en nuestro cuarto de animales. Los cristales
en mi opinión deben ser de 10mm por lo menos, y obligatoriamente contar con cerrojos
o candados en las puertas a prueba de terceras personas.
Un anécdota que les quiero contar es acerca de un muchacho de aproximadamente 18-
20 años que vi en el Hospital de Palm beach Florida mordido por una serpiente (nunca

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supe que fue). Mientras estuve allí me pude enterar de que el accidente fue por una
mordedura a través de la rendija de ventilación, lo que me pone muy pensativo, ya que
por ejemplo yo uso los afamados vision cage para mantener mis serpientes, me parecen
lo mejor que hay, pero estoy seguro que moviéndolos alguna vez puse la mano o un
dedo o parte de él encima de alguna rejilla de ventilación lo que pudo haber ocasionado
un fatal accidente, ya no hablemos de terrarios caseros o de sencillos trasportines, así
que por favor tomen esto de la ventilación muy en serio a la hora de diseñar un terrario
seguro.
El terrario, como dije antes debe tener un candado o cerrojo, a prueba del mejor de los
curiosos, cristales gruesos, etc. Yo les tengo puestos a todos mis terrarios unas etiquetas
de advertencia, donde se ve claramente que son potencialmente peligrosos, otra etiqueta
con el nombre “popular o común” del animal y por supuesto el científico (ya que es
información de primer orden a dar a conocer en un hospital a la hora de accidentes),
también tengo una cartelera de corcho en la pared con una advertencia a color bastante
grafica, los teléfonos de los hospitales cercanos, servicios de ambulancias, centro con
antídotos, el 911, los bomberos y todos los relacionados con una posible e inmediata
ayuda, los nombres y números telefónicos están en negrilla y resaltador amarillo,
también tengo una tabla de procedimientos de primeros auxilios, con los datos de los
animales y datos míos (como, peso, edad, etc.) para dar la información a las personas
que nos estén socorriendo, tengo el numero de los centros que poseen los sueros y que
están cercanos a los hospitales para su pronto traslado, adicionalmente y debido a donde
vivo lo tengo en ambos idiomas.
Cuento con pocos terrarios para venenosas, y todos están en el mismo cuarto, un cuarto
en donde no entra nadie, salvo mi esposa y yo, en el peor de los casos, ese cuarto es
casi hermético por lo cual nada podría salir del mismo.
Un consejo que suelo dar a los más jóvenes es que no engañen a padres, hijos y amigos,
a veces para poder obtener el permiso o aceptación necesaria en nuestras casas, no
decimos la verdad, o restamos importancia al asunto. Yo nunca lo hice, y hoy en día le
cuento todo a mi esposa, cosa que no se toma del todo bien, pero es necesario que todos
en casa estén 100% conscientes de lo que tienen y 100% preparados para actuar en una
emergencia. Los niños y adolescentes son un peligro por la curiosidad que tienen,
entonces recordemos que si no estamos presentes, los demás miembros de la familia que
si estén van a pasar a ser parte fundamental en la seguridad, ya que en mi ausencia,


                                                                                        53
estoy seguro que mi esposa no dejara entrar a nadie a esa habitación, lo cual me
tranquiliza muchísimo.


¿Cuáles    son    los    errores   básicos   y   más     comunes     que    se   cometen?
No mantener o medir la distancia que se debe tener entre uno mismo y el animal,
muchas veces nos sorprenden. Aunque no es comparable les contare mi experiencia con
las corallus hortulanus, o boas de árbol del amazonas, hacía mucho tiempo que no tenía
y hace unos meses empecé con ellas otra vez, pues al estar desacostumbrado no les tome
bien la distancia, y el primer mordisco que intentó darme estuvo a escasos 20cm. de mi
cara, no recordaba el rango de acción de la mordida, lo que puede proyectarse ese
animal, pues lo mismo me podría haber pasado por desconocimiento o por
desconfianza. Ahora volviendo a las venenosas, hace poco descubrí por que le llamaban
jumping viper a las (Bothrops nummifer), después de tomarle bien la distancia y más o
menos a la tercera manipulación descubrí que en el intento de mordida pueden incluso
levantar su cuerpo del suelo en su totalidad. Por lo que son errores muy comunes con
especies nuevas y no muy conocidas para nosotros, o bien diferentes tamaños dentro de
las mismas.
Otro error como mencione arriba es el de los dedos en donde no deben estar, las rejillas
de ventilación, agujeros de tornillos, canales de puertas, trasportines, etc., muchas veces
el animal morderá habiendo alguna superficie de por medio, pero un diente puede pasar
fácilmente por allí acusándonos un daño considerable.
La falta de concentración, muchas veces se pierde la concentración en lo que estamos
haciendo e incurrimos en la irresponsabilidad de perder de vista al animal, olvidar cerrar
bien la jaula, poner el cerrojo, y otros tanto errores, así que por favor olvídense de estar
hablando con otras personas (desocupar el cuarto es lo mejor), escuchar música, fumar,
comer, beber, y cualquier otra actividad que nos saque de foco.
El mal uso, o uso de herramientas de poca calidad, como lo explique más arriba esto
puede ocasionar disgustos, acuérdense que por física elemental a la romperse una barra
que estamos sujetando, la punta (con todo y animal) vendrá hacia nosotros. El uso de
herramientas muy cortas o equivocadas, he incluso el mal uso de la mejor de ellas.
Errores al practicar el tan soñado pining o al entubar, recuerden que el pining debe
hacerse solo con mucha práctica y en mi opinión cualquier contacto con el animal que
hagamos con nuestras propias manos debe hacerse solo si es 100% necesario, de lo
contrario no hay por qué exponerse. Entubar al animal es lo mejor en mi opinión.

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Y por último, que yo recuerde por los momentos, es la confianza, esta ultima “nos
traiciona a todos”… El hecho de tener experiencia con algunas venenosas no nos
convierte en expertos con otras especies, yo hace poco hablando con un compañero le
conté mi experiencia con una cobra real, el cómo llegó a intimidarme y lo mal e
inseguro que me sentí tratando de dominarla, es un animal que yo “particularmente” no
pienso tener. Por eso el que alguien tenga 5 años manejando crótalos no tiene garantía
de hacerlo bien con algún elápido rápido y por eso ocurren accidentes, ya que todas las
especies tienen diferentes reacciones y movimientos a los cuales hay que responder con
diferentes procedimientos y no engañarnos acerca de nuestra experiencia con venenosas
ya que dentro de ellas hay diferencias que van del cielo a la tierra.


Dejando de lado los temas científicos, en la región dónde usted vive ¿tiene idea de
la responsabilidad civil, los posibles riesgos económicos y los posibles riesgos
legales y penales en los que se puede estar inmerso si se produce un escape, una
mordida, etc.?
Yo vivo en los Estados Unidos, específicamente en el estado de la Florida, y tuve que
sacarme una licencia para la tenencia de venenosas, en donde tuve que comprobar y
demostrar una cantidad de habilidades y de horas de experiencia para obtener la
licencia, además de otros requisitos como lo fueron la revisión de mi casa e
instalaciones destinadas para tal fin por parte del departamento llamado “Florida fish
and Wild live” el cual determinó si estaba acorde con las normas de seguridad y
regulaciones que establece dicho ente, pagar un cuota anual de $100 entre otras tantas
cosas, adicionalmente se reservan el derecho de inspeccionar mis instalaciones cuando
les dé la gana y las veces que les dé la gana para el otorgue, prorroga o revocación de la
misma, por cierto cabe destacar que dichas normativas no son sencillas y aunque las veo
lógicas sé por experiencia que el 60% de las casas de cuidadores de venenosas que he
visitado en todo el mundo no cumplen con el 80% de las normas que tendrían que
cumplir, esto lo digo a nivel de reflexión…


Yo vivo en una sociedad muy inquisitiva que no da derecho a equivocaciones porque
enseguida te devoran vivo, cada cual adaptará lo que digo a su entorno y realidad... Por
lo que un accidente de este tipo no dará la menos tregua hacia la persona responsable.
Una mordida, puede quitarte la vida o en el mejor de los casos dejarte mutilado,
deforme, o con secuelas y daños de por vida.

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Un accidente de este tipo es muy costoso, si tomamos en cuenta la gravedad de lo que
una mordida puede implicar clínicamente, sabiendo que el promedio de costos de un
solo día de hospitalización en este país puede superar los $4000, imagínense lo que
costará estar un mes, dos o tres, o sólo un par de semanas. Viendo los precios de los
sueros-antídotos del Miami-dade FIRE Rescue pude observar que una ampolla puede
llegar a costar $900 -a veces un poco menos y muchas veces un poco más-, y teniendo
en cuenta que algunas mordidas pueden necesitar hasta 30 ampollas, tendrán bases para
hacerse una idea de lo que representa en términos de dinero este accidente, hablamos de
facturas de $80.000 - $90.000 dólares, he incluso mucho más -también mucho menos-,
pero que sin un muy buen plan de seguros arruinará seguro financieramente a cualquier
familia durante un par de generaciones. Aunque muchas veces, teniendo un plan de
seguros bueno, puede ser igual de destructor por que recurren a algunas cláusulas que
son difíciles de afrontar.
Muchos seguros pueden o no cubrir este tipo de accidentes, incluso sé de un caso que
fue mordido en el bosque y el seguro cubrió pero primero leyó el informe de la policía
que decía que efectivamente fue en el bosque, que de ser en su casa “a lo mejor”
hubiesen tratado de darle la vuelta “quién sabe?”.
En estos casos, la policía puede ir a tu casa y constatar si eres o no cuidador y de
constatar que lo eras sin licencia júralo que incurres en un crimen y que el seguro no
cubrirá nada de tu cuenta, tendrás un problema legal y estarás arruinado
financieramente, y a todas estas no hemos nombrado el daño corporal que puede variar
muchísimo, por cierto, en algunos países aunque mueras le dejaras “la cuenta” a tus
familiares.
Si el mordido es una tercero, prepárate, una posible demanda te viene en camino, y si no
tienes un seguro que cubra accidentes dentro de tu casa podrás perder esta misma casa,
eso sin hablar de cargos penales y criminales si es causado por un escape o similar
irresponsabilidad.
Pero claro que todo dependerá del país en el que vivas. Cuando viví en Venezuela,
llevamos a un mordido por serpiente al hospital de Coche (el encargado en estos
menesteres en Caracas) estuvo una semana y no pagó nada, creo que “colaboró con
algo” pero fue irrisorio, un paraíso vaya. Pero en Canadá hay un caso famoso de un
muchacho al que se le escapó una tarántula y el juez le levanto varios cargos, uno por
tenencia de animales peligrosos, otro por cargos criminales (por el escape) y así
sucesivamente, unos de $3000 otros de $4000 y otros de $2000 hasta que sumo la linda

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cifra de $22000 que adicionalmente tendría que pagar en un plazo de un año o iría
preso, y ese año estaría en probatoria.


Ya para acabar, todo esto que explica es en cuanto a USA, ¿pero qué opina de la
situación legislativa de este tipo de animales en España?
La verdad es que no podría darte una respuesta 100% segura; puesto que en España
recientemente se está moviendo el tema de leyes y regulaciones en este sentido.
Básicamente fue en el 2010 cuando se empezó con toda esta parafernalia (según mi
opinión al considerar las leyes para estos animales)… Y digo parafernalia porque las
leyes están elaboradas por gente sin criterio o sin conocimientos al respecto, sin ir muy
lejos en Madrid aplicaron (por flojera, ignorancia o comodidad, solo Dios sabe) la
misma regulación que se usa para perros y englobaron todo dentro de "potencialmente
peligrosos", poniendo al mismo nivel que todos los reptiles de más de 2kg, cocodrilos,
peces, anfibios y artrópodos venenosos ¡¡¡incluso se cometió esa estupidez de
catalogarlos según su peso…!!! Esta ley concretaba que para la tenencia de este tipo de
animales era necesario:
- Permiso de tenencia de animales potencialmente peligrosos
- Seguro de responsabilidad civil de 120.000 euros
- Microchip del animal
- Permiso del ayuntamiento para su tenencia.
Los amigos españoles que tengo que han tratado responsablemente de tener todo en
orden se han caído en el último paso, el Permiso del ayuntamiento para su tenencia,
cuando tendría que ser el primero, el permiso de tenencia de animales potencialmente
peligrosos.
Todavía hay vacíos legales, contradicciones y disparates que se están discutiendo
actualmente, si a eso le sumas que cada provincia o comunidad autónoma hace las cosas
como les da la gana independientemente de lo que haga el vecino pues tenemos una
disparidad de criterios y opiniones bárbara…
Leyes ya hay, cosa que antes no había, pero la cosa está en conocerlas todas según la
zona en que te encuentres…


Muchas gracias por su paciencia y su amabilidad.




                                                                                      57
4. USOS CIENTÍFICOS DE LAS SERPIENTES VENENOSAS

4.1. Introducción
Las serpientes venenosas tienen actualmente varios usos en nuestra sociedad, pero el
más destacable es la producción de sueros antitoxina. Los sueros antitoxina o
antivenenos son el único tratamiento específico para las mordeduras de serpientes
venenosas. Se producen a partir del fraccionamiento de plasma obtenido generalmente
de grandes animales domésticos hiperinmunizados ante los venenos deseados. Menos
frecuente pero no importante es la elaboración de sueros antitoxina a partir de pequeños
animales. Cuando se inyecta en el paciente envenenado, el suero neutralizará cualquier
de los venenos usados en su producción, y en ocasiones también neutralizará venenos
de especies relacionadas.

Históricamente, para la preparación del antiveneno, se usó suero entero separado de la
sangre de caballos hiperinmunizados. Pero más tarde se descubrió que los anticuerpos
(inmunoglobulinas) eran la molécula activa responsables de la acción terapéutica y
entonces se empezó a usar el proceso de purificación de las inmunoglobulinas (o
fragmentos de inmunoglobulinas) en lugar del suero crudo.


Hoy en día, la plasmaféresis, donde los eritrocitos son reinyectados en el animal
donante durante las primeras 24 horas seguidas a la recolecta de sangre, se usa
comúnmente para reducir los casos de anemia en el animal hiperinmunizado. Por
consiguiente, el plasma es preferible al suero par usar como materia prima en la
obtención de las inmunoglobulinas. Los términos “suero antimorderura de serpiente” o
“suero antitoxina” se usan normalmente, pero “inmunoglobulina antiveneno de
serpiente” es el término más adecuado.


4.2. Trasfondo epidemiológico
El envenenamiento y muerte derivados de la mordedura de una serpiente es de
particular importancia para la salud pública en áreas rurales de África, Asia,
Latinoamérica y Nueva Guinea, siendo los agricultores y niños los grupos más
afectados. La mayoría de víctimas no son tratadas en centros gubernamentales, por lo
que no quedan registradas correctamente y la incidencia de la mortalidad y morbilidad
global está subestimada. Otro obstáculo para la estimación real de esta incidencia es que


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el certificado de defunción por mordedura de serpiente es a menudo impreciso. Las
estimaciones publicadas referentes a este tema presentan unos valores que van de los
421.000 envenenamientos y 20.000 muertes hasta los 2,5 millones de envenenamientos
y 100.000 muertes anuales.


* Puntos clave:
   -   Mejorar la formación del personal médico incluyendo las causas locales,
       manifestaciones y tratamientos de las mordeduras de serpiente venenosa.
   -   Establecer las mordeduras de serpiente venenosas como enfermedad de
       declaración obligatoria.
   -   Crear encuestas epidemiológicas coherentes y estandarizadas.
   -   Mejorar la presentación de informes y registros en hospitales, clínicas,
       dispensarios y centros de atención primaria, relacionando la mordedura con las
       especies de serpiente venenosa causante siempre que sea posible.
   -   Realizar correctamente los certificados oficiales de defunción.


4.3. Distribución mundial de las serpientes venenosas
Basándose en la literatura herpetológica y médica actual, es posible priorizar
parcialmente las especies de serpientes que son de más relevancia médica en diferentes
regiones. Como ya hemos comentado antes, la estadística detallada de las especies
responsables Establecer una lista de especies médicamente importantes para diferentes
países, territorios y otras áreas se basa en la extrapolación de los pocos estudios
conocidos, así como de la biología de las especies de serpientes en cuestión. Las
especies componentes de esta lista son:
   -   aquellas que son más comunes o generalizadas en áreas con grandes poblaciones
       humanas y que causan numerosas mordeduras, resultando en altos niveles de
       morbilidad, discapacidad o mortalidad entre las víctimas; o
   -   especies que causan envenenamientos con una mayor amenaza para la vida pero
       no producen un alto número de mordeduras; o
   -   especies poco conocidas pero que se sospecha que entran en esta categoría.


El veneno de estas especies debe ser considerado como punto inicial para establecer
objetivos importantes en la producción de antiveneno.


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Hay otras especies de serpiente que rara vez muerden a los humanos pero que son
capaces de causar un envenenamiento severo o mortal. En algunos casos existe
neutralización cruzada de venenos mediante antivenenos poliespecíficos (e.g géneros
Agkistrodon, Porthidium, Bothriechis o Atropoides). En otros, no hay neutralización
cruzada efectiva y los fabricantes pueden considerar necesaria la producción de un
pequeño volumen de antiveneno monoespecífico para evitar casos esporádicos pero
potencialmente mortales (e.g. serpiente negra del desierto (Walterinnesia aegyptia) o la
cobra real (Ophiophagus hannah)). Finalmente, no existen antivenenos actualmente
contra la mordedura de especies como por ejemplo la víbora africana de cascabel
(Atheris, Proatheris) o otras víboras africanas, del sureste Indio y Sri Lanka.


Una alternativa a la producción de antiveneno para estas especies menos comunes, es la
fabricación de antivenenos poliespecíficos para grupos ampliamente distribuidos que
compartan componentes similares en el veneno.


También hay un número de serpientes marinas con un potente veneno capaz de causar
enfermedades o la muerte. El mejor antiveneno para serpientes marinas de la actualidad
está creado a partir del veneno de una de ellas, Enhydrina schistosa, junto con el de una
serpiente terrestre, Notechis scutatus.


* Puntos clave:
   -   La identificación de las serpientes venenosas de mayor importancia médica y
       causantes la mayor parte de lesiones, discapacidades y/o mortalidad es vital para
       encontrar antivenenos efectivos.
   -   El apoyo a la capacidad local para producir veneno como medio para garantizar
       que   los   immunógenos       del   veneno    de    poblaciones    geográficamente
       representativas de especies médicamente importantes de serpiente son usados en
       la producción de antiveneno debe mejorar la especificidad de los antivenenos.




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4.4. Proceso de elaboración de sueros antitoxina
Diseño del antiveneno: selección del veneno de serpiente
La selección de los venenos más adecuados para la producción de antiveneno necesita
ser cuidadosamente analizada y debe tener en cuenta:
   -   la región geográfica donde será usado el antiveneno.
   -   las especies médicamente más relevantes de esa región.
   -   la variabilidad de composición del veneno de una misma especie en esa región
   -   la información sobre la neutralización cruzada de antivenenos ante venenos de
       especies no incluidas en la mezcla de venenos usados para inmunizar a los
       animales para la fabricación de antiveneno.


Un tema importante en el diseño del antiveneno es definir si tienen que tener actividad
monoespecífica o poliespecífica.


Los antivenenos monoespecíficos tienen el uso limitado para una única especie de
serpiente venenosa o para un grupo pequeño de especies relacionadas que presenten
neutralización cruzada. Estas condiciones se aplican en áreas donde:
   -   solo hay una especie médicamente importante (e.g Vipera berus en el Reino
       Unido i Escandinavia)
   -   un simple análisis de sangre, adecuado incluso para centros de salud periféricos,
       con el que se define a la especie mordedora (e.g detección de sangre coagulada
       en el tercio norte de África donde solo Echis spp causa coagulación de la sangre)
   -   una simple aproximación algorítmica permite deducir las especies de un patrón
       de características clínicas y biológicas.
   -   existe un test inmunodiagnóstico rápido, fiable y asequible para identificar las
       toxinas sin ambigüedades.


Por su parte, los antivenenos poliespecíficos están recomendados en países habitados
por varias especies de relevancia médica y donde no hay síndromes clínicos distintivos
que dirijan el uso de un antiveneno monoespecífico. Pueden crearse mediante la
inmunización de animales con una mezcla de venenos de diferentes especies. El
antiveneno obtenido contendrá anticuerpos contra los componentes de los diferentes
venenos. Existen otras dos formas de obtenerlo:


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   -   inmunizando animales diferentes con el veneno de una sola especie y después
       mezclar diferentes plasmas hiperinmunizados para el fraccionamiento; o
   -   mezclando cantidades adecuadas de antivenenos purificados pertinentes antes de
       la formulación. En este caso es importante monitorizar la potencia de cada
       antiveneno monoespecífico para garantizar que la potencia de la mezcla en el
       producto final es consistente.


En algunas regiones, se puede distinguir diferentes presentaciones clínicas (neurotóxica,
daño tisular local y/o perturbaciones hematológicas), por lo que se justifica la
preparación de antivenenos poliespecíficos separados ante cada una de ellas.


* Puntos clave:
   -   Cuando se seleccionen los antivenenos las autoridades sanitarias nacionales
       primero deben obtener y considerar la información de las especies locales y su
       relativa importancia médica.
   -   El diseño de la mezcla de veneno usada en la inmunización, y la decisión de
       preparar antivenenos monoespecíficos o poliespecíficos, dependen de la
       información epidemiológica y clínica referente a las mordeduras de serpiente en
       ese territorio en particular.
   -   Debido a la dificultad para identificar clínicamente las especies de serpiente
       responsables del envenenamiento, el uso de antivenenos poliespecíficos
       adecuados a la zona geográfica es más conveniente que no el uso de un
       antiveneno monoespecífico.
   -   La preparación de antivenenos mediante la inmunización de animales con una
       mezcla de venenos de serpientes relacionadas taxonómicamente puede resultar en
       un mayor título de antiveneno.
   -   Un fabricante que solicite una autorización para comercializar antiveneno en una
       región específica, debe mostrar evidencias experimentales de pruebas preclínicas
       de que el producto presenta capacidad de neutralización ante los diferentes
       venenos locales.




                                                                                      62
Preparación y almacenamiento del veneno de serpiente
El veneno se usa tanto para hiperinmunizar los animales, dentro de la producción de
antiveneno, como para proporcionar muestras referencia para la evaluación rutinaria o
preclínica de la potencia de los antivenenos. Los venenos usados deben ser
representativos de la población des serpientes de la zona donde el antiveneno será
distribuido. Para ello, es indispensable que se recolecten juntos el veneno de no menos
de 20-50 especímenes.
Los productores de veneno deben seguir rigurosamente las siguientes recomendaciones
y proporcionar pruebas del cumplimiento de:
   -   origen geográfico y tamaño (y por lo tanto, la edad aproximada) de cada una de
       las serpientes usadas en el proceso.
   -   detalles taxonómicos de cada serpiente usada.
   -   aplicación correcta de los documentos CITES (Convention on International
       Trade in Endangered Species) en el caso de especies en peligro de extinción.
   -   medidas preventivas en para evitar recolectar veneno de serpientes enfermas.
   -   identificación individual de serpientes que contribuyen en cada lote.
   -   trazabilidad de cada lote de veneno.


También es muy recomendable que cumplan lo siguiente:
   -   congelar rápidamente del veneno después de la recolecta.
   -   liofilizar el veneno en almacenamientos a largo plazo.
   -   confirmación de la similitud entre lotes de veneno del mismo origen.


Producción de veneno de serpiente para la inmunización
Todas las nuevas serpientes adquiridas deben estar en cuarentena un mínimo de 2 meses
en una sala especial (“sala de cuarentena”) que debe estar localizada lo más lejos
posible de la “sala de producción” donde se mantiene las serpientes cualificadas para ser
ordeñadas. Las serpientes enfermas deben ser tratadas y su cuarentena tiene que
extenderse hasta 2 meses una vez totalmente recuperadas clínicamente. Los animales
enfermos encontrados en la “sala de producción” pueden ser tratadas in situ pero no
pueden ser ordeñadas. Si se usa un tratamiento antibiótico, la serpiente no puede ser
ordeñada durante las 4 semanas siguientes al final del tratamiento. Cuando están bien
mantenidas, las serpientes adultas pueden vivir en una granja de serpientes durante 10 o
más años.

                                                                                      63
Es preferible ubicar a las serpientes en terrarios separados suficientemente grandes para
permitirles moverse. Decenas de terrarios pueden ser acomodados en la misma “sala de
producción”, proporcionando un espacio suficiente para el mantenimiento y el ordeño.
En el acceso a la sala debe haber una bandeja que contenga un antiséptico, de forma que
el calzado toda la gente que entre sea automáticamente tratado. El acceso debe ser
restringido al personal responsable de su mantenimiento. La sala tiene que estar cerrada,
con cualquier ventana cerrada permanentemente o protegida por barrotes y mosquiteras.
Se debe evitar tener simultáneamente abiertas dos puertas y el espacio debajo de éstas
no debe ser superior a 3mm. Serpientes de la misma especie, recogidas al mismo tiempo
deben ser ubicadas en el mismo rack.


Cuando hay diferencia entre la composición del veneno de un ejemplar joven o adulto
de la misma especie, como en el caso de las especies Bothrops i Crotalus, el veneno de
cierta proporción de individuos jóvenes puede ser mezclado con el de adultos. Las
serpientes son alimentadas normalmente después de ser ordeñadas, idealmente con
ratones muertos u otras presas adecuadas a las diferentes especies de serpientes.


En la granja de serpientes, además de las salas dedicadas a la producción y
mantenimiento de serpientes, también debe haber espacio para salas de limpieza de los
terrarios, cría de ratones y ratas, almacenamiento y conservación del veneno producido
o laboratorios de control. Es deseable que en sala de limpieza se disponga de dos
conjuntos de limpieza, uno de grande para el equipamiento de producción de veneno y
otro más pequeño para el equipamiento del área de cuarentena. La cría de ratones y ratas
no se puede llevar a cabo en la misma sala debido al estrés que las ratas producen en los
ratones. Si se cría una serpiente en la granja, son necesarios una incubadora de huevos y
salas especiales para recién nacidos. Cuando sea posible, disponer de un pequeño
laboratorio para realizar controles de calidad puede llegar a ser es muy útil.


A continuación se describirá el proceso de obtención del veneno, es decir, el ordeño.
Todas las operaciones deben ser descritas en procedimientos escritos, que tienen que ser
comprobados y revisados periódicamente de acuerdo con un documento maestro. Los
pools de veneno requieren números de lote únicos, y los venenos que contribuyen a
formar el pool deben ser trazables. El intervalo entre ordeños es variante y oscila entre


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cada 2 o 3 semanas hasta cada 2 meses, excepto para especímenes que están en
cuarentena o bajo tratamiento y serpientes en proceso de cambio de muda.
La serpiente se retira del terrario
suavemente con un gancho y se
coloca sobre una almohadilla de
goma      espuma    antes    de   ser
sujetada por detrás de la cabeza.
Para especies muy peligrosas, el
uso de anestesia general de corta
acción, o frío moderado (15ºC)
durante     el     ordeño,      puede
considerarse para disminuir el
riesgo de accidente tanto para la
serpiente        como    para      el
manipulador. Para recolectar el
veneno, se agarra la cabeza de la
serpiente entre el dedo pulgar e
índice, justo detrás del ángulo de      Fig. 10. David Bitis ordeñando una víbora del Gabón

la mandíbula, mientras el cuerpo
de la serpiente se sostiene entre el tronco y el brazo del manipulador (fig. 10). Un
asistente puede ocluir suavemente la cloaca de la serpiente para prevenir la
contaminación de la zona por heces. Aplicando una suave presión, se fuerza la apertura
de las mandíbulas, la exposición de los colmillos, y en el caso de las víboras, la erección
de éstos. Los colmillos se empujan a través de una membrana de plástico/parafilm
enganchado sobre el borde de un recipiente de vidrio, y el veneno se expulsa. El uso de
contenedores de silicona minimiza la adhesión de veneno en las paredes del recipiente.
Cualquier muestra de veneno contaminada con sangre debe ser desechada. Después de
la extracción del veneno, los colmillos son cuidadosamente retirados del recipiente de
recolección, previniendo posibles daños en la boca y dentadura, así como evitando que
la serpiente se muerda a sí misma. Después de cada ordeño, los materiales utilizados
deben ser esterilizados y seguidamente enfriados con una corriente de aire. A la vez que
se ordeña, se puede comprobar el estado bucal y de los dientes de la serpiente, así como
examinar la presencia de ectoparásitos o pentastómidos. El ordeño también se
aprovecha para realizar mientras tanto la limpieza y desinfección del terrario.

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Diferentes serpientes del mismo grupo (misma especie o subespecie recogidas en la
misma área al mismo tiempo) pueden ser ordeñadas en el mismo recipiente. Es
importante para la mayoría de venenos ser congelados rápidamente a -20ºC o menos
grados en la hora siguiente a la extracción.


Es importante identificar el vial en el que el veneno se ha recolectado con un número de
referencia adecuado, que permite saber las serpientes usadas, el día del ordeño, el
nombre del operador y otra información importante. Durante el ordeño, se recomienda
vestir ropa protectora y una máscara así como guantes de vinilo para prevenir accidentes
e infecciones. El equipo usado para el almacenaje del veneno congelado y liofilización,
debe ser lavado para evitar contaminaciones cruzadas.


También es posible recolectar veneno de serpientes salvajes. En este caso, el equipo de
recolección debe incluir un herpetólogo o zoólogo para identificar las serpientes. Las
serpientes que se encuentren enfermas, heridas o hembras grávidas no deben ser
ordeñadas. El manejo y ordeño de la serpiente se debe realizar en un ambiente donde
haya el menor riesgo de contaminación externa, como por ejemplo el interior de un
vehículo. El veneno obtenido debe ser congelado lo antes posible.


Personal responsable del manejo de las serpientes
Ordeñar es una operación peligrosa, pues se han documentado casos de mordeduras y el
consiguiente envenenamiento. El personal debe estar bien entrenado y debe entender el
riesgo de ser mordido y envenenado. Para evitar esto, se debe usar ropa protectora,
cubrirse los ojos con gafas (sobre todo con serpientes escupidoras). Si el veneno esta
liofilizado o desecado, ya que los aerosoles que se forman pueden afectar a las personas
a través de heridas o membranas mucosas y del ojo.


En caso de mordedura se debe pedir ayuda, devolver la serpiente a su terrario o caja y
transportar la víctima a un área designada para primeros auxilios. Una inmovilización
inmediata aplicando presión es adecuada para tratar mordeduras que contengan venenos
neurotóxicos. En caso de entrar en contacto con los ojos, es urgente una irrigación con
un volumen generoso de agua limpia.            Como precaución, toda víctima debe ser
trasladada a un hospital. Llevar la etiqueta identificadora de la serpiente causante de la
mordedura resulta de gran ayuda para garantizar una buena elección con el antiveneno .

                                                                                       66
* Puntos clave:
   -   Las granjas de serpientes bien gestionadas son la clave para la producción de
       preparados de veneno que cumplan los requisitos para una efectiva producción de
       antivenenos.
   -   Los procedimientos de mantenimiento, manejo y ordeño de las serpientes, así
       como todos los aspectos de la recolección de veneno deben estar adecuadamente
       documentados y programado
   -   Los venenos usados en la preparación de antiveneno deben ser representativos de
       la población de serpientes de una zona concreta (mínimo 20-50 muestras)




   Un fabricante de veneno debe ser capaz de demostrar lo siguiente:
   -   La identidad taxonómica y origen geográfico de cada uno de los animales usados
       para la producción de veneno deben ser conocidos y registrados.
   -   La ubicación, alimentación y manejo de serpientes debe seguir protocolos
       documentados.
   -   El personal tiene que estar bien entrenado y debe trabajar bajo medidas de salud
       y seguridad.
   -   No se debe ordeñar animales enfermos, y estos deben establecerse en cuarentena.
   -   La trazabilidad de cada lote de veneno debe estar garantizada.
   -   Los venenos deben ser congelados como antes posible, como mínimo durante la
       primera hora.


Control de calidad de los venenos
Es vital identificar con precisión las especies de cada serpiente usada para la producción
de veneno y la taxonomía debe ser validada por un herpetólogo competente. Para ello,
tradicionalmente se usan características como por ejemplo el patrón de colores, aunque
actualmente también se usa el análisis de ADN. Toda la información referente a cada
lote individual de veneno debe estar disponible ante la solicitud de un auditor o ante un
control de las autoridades. En el caso de almacenamiento a largo plazo, los venenos
pueden ser resecados regularmente para garantizar el contenido mínimo de agua, para
mantener su estabilidad.


                                                                                       67
Debido a la gran variedad en la composición de los venenos incluso de una misma
especie se recomienda que se establezcan unas referencias nacionales que cubran en su
totalidad la variabilidad interespecie. Establecer venenos de referencia garantiza que los
antivenenos producidos serán probados contra los venenos más relevantes de países y
regiones específicas. Es responsabilidad del productor de veneno proporcionar toda la
información referente a las serpientes usadas en el proceso, los controles de calidad y
los estudios preclínicos. Ésta información debe ir incluida en el dossier técnico junto a
la autorización de comercialización de cualquier antiveneno.


Además de toda la información anteriormente comentada, también se tiene que añadir
información bioquímica y biológica. Ésta puede incluir el análisis de:
   -   Características bioquímicas del veneno:
          o concentración de proteínas.
          o perfiles de la cromatografía de exclusión de tamaño
   -   Actividad enzimática y toxicológica del veneno:
          o dosis letal media (DL 50 )


* Puntos clave:
   -   El control de calidad del veneno es esencial para garantizar que es representativo
       de la zona donde se quiere distribuir el antiveneno
   -   La trazabilidad de cada veneno es importante para la detección rápida de
       cualquier error que pueda ocurrir durante el proceso de preparación.
   -   Información bioquímica y biológica adicional se debe presentar además de la ya
       comentada anteriormente.


Selección y atención veterinaria de los animales usados para la producción de
antivenenos
Antes de que un animal sea introducido en la manada usada en un programa de
producción, debe ser sometido a un periodo de cuarentena (según el país, de 6 a 12
semanas). Después del periodo de cuarentena, si el animal está sano según un examen
veterinario, y los resultados de varias pruebas serológicas dan negativo, el animal se
puede incorporar a la manada. En el caso de caballos y otros équidos, los animales de
entre 3 y 10 años son normalmente incluidos en el programa de producción. En el caso
de las ovejas, los animales que se retiran de la producción de lana han demostrado

                                                                                       68
capacidad para producir anticuerpos útiles durante varios años. No hay ninguna raza
preferida, pero en general los caballos y ovejas grandes son preferibles porque con ellos
se obtienen grandes volúmenes de sangre.


Dependiendo de la localización epidemiológica, los animales deben ser vacunados
contra el tétanos y posiblemente otras enfermedades endémicas como la rabia, influenza
equina, ántrax o brucelosis. El personal que entre en contacto con estos animales debe
ser vacunado contra la rabia y el tétanos. Hay que tener un registro individual para cada
animal usado en el programa de inmunización. La respuesta inmunitaria ante los
componentes de los venenos debe ser seguida para detectar cuando el animal alcanza un
título adecuado de antiveneno.


Si un animal muestra algún signo de enfermedad, debe ser retirado del programa para
ser tratado. Si se controla la enfermedad, puede retornar a la manada después de un
tiempo apropiado, normalmente 4 semanas. En caso de vacunación, el periodo de espera
para retornar al programa no debe ser menor a 1 mes. Como consecuencia a la
inmunización con veneno, un problema común es el desarrollo de úlceras o abscesos
locales (estériles o infectados). Este es un problema frecuente cuando se usan venenos
necrotizantes. La solución pasa por realizar todas las inyecciones bajo condiciones
asépticas.


* Puntos clave:
   -   Todos los animales deben pasar por un periodo de cuarentena de entre 6 y 12
       semanas
   -   Durante el programa, si un animal enferma, debe ser separado temporalmente
       para recibir tratamiento. Hay que prestar atención a las zonas de inyección.
   -   La respuesta inmunológica al veneno debe ser monitorizada, así como los títulos
       de antiveneno mediante análisis del plasma.
   -   Un animal que reciba un antibiótico u otro medicamento debe ser retirado del
       programa por un periodo no inferior a 1 mes.




                                                                                      69
Pautas de inmunización y el uso de adyuvantes
Para conseguir el objetivo deseado, son importantes las siguientes consideraciones:
   -   los venenos usados deben ser preparados como se ha descrito anteriormente y
       deben estar en óptimas condiciones para inducir anticuerpos específicos y
       neutralizantes.
   -   las pautas de inmunización no deben afectar seriamente la salud del animal.
   -   la inmunización debe ser técnicamente simple y económica para usar la menor
       cantidad de veneno posible.


Como ya hemos comentado, los animales grandes son preferibles a los pequeños debido
a que producen un mayor volumen de antiveneno. Entre los animales grandes, el caballo
es el de elección para la producción de antiveneno comercial, puesto que es dócil,
prospera en la mayoría de climas y tiene una grande cantidad de plasma. La oveja
también se ha usado como alternativa porque es más barata, fácil de criar, puede tolerar
mejor los adyuvantes oleosos y sus anticuerpos pueden ser de utilidad en pacientes que
son hipersensibles a las proteínas equinas. Cuando se usa una oveja o cabra, los
productores deben cumplir con las regulaciones para minimizar el riesgo de transmisión
de las encefalopatías espongiformes a los humanos.


Preparación de las dosis de veneno
Para preparar las dosis de veneno, toda la manipulación del veneno debe ser realizada
usando técnicas asépticas, y en el caso de venenos altamente tóxicos se puede usar una
vitrina citotóxica. Los lotes de veneno usados para inmunizar a los animales deben ser
registrados y los contenedores donde el veneno se disuelve deben ser debidamente
identificados. Los venenos, cuando se liofilizan, son muy higroscópicos y alergénicos,
por lo tanto se tiene que tener atención al manipularlo. Cuando un veneno se saca del
congelador, se debe dejar temperar a la temperatura de la sala antes de abrirlo, evitando
así que la condensación cause imprecisión en medidas de peso, pero sobre todo para
evitar la degradación proteolítica de las proteínas del veneno por acción de los enzimas.
Los disolventes usados con los venenos deben ser estériles y no exceder la fecha de
caducidad. Se recomienda que los venenos usados para inmunizar estén recién
preparados en el momento de su uso. Todo el equipo usado para el almacenamiento
(congeladores y neveras) y preparación (e.g balanzas) de los venenos debe ser calibrado
y validado para su propósito.

                                                                                      70
Algunos venenos pueden causar toxicidad local y/o sistémica cuando se inyecta en
caballos en el inicio del programa de inmunización. Hay métodos físicos y químicos
para disminuir la toxicidad del veneno, como por ejemplo el tratamiento con aldehídos,
hipoclorito, radiación ultraviolada o gamma o el calor, entre otros. Sin embargo, además
de los puntos tóxicos, la mayoría de veces también se destruyen los puntos antigénicos.
De hecho, la detoxificación no es necesaria si se inyecta una pequeña dosis del veneno
bien emulsionado en un adyuvante. Existen varios tipos de adyuvantes, como por
ejemplo los adyuvantes completos o incompletos de Freund, las sales de aluminio, los
bentonitas o liposomas. La elección del adyuvante se determina por su efectividad.


Para disminuir la infección en los puntos de inmunización, todas las manipulaciones se
realizan bajo condiciones asépticas. Las soluciones de veneno son preparadas en agua
destilada o PBS y se filtra en una membrana de 0.22µm de diámetro. Después se mezcla
y/o emulsifica con un adyuvante.


Inmunización del animal
Las áreas que serán inmunizadas (fig. 11) deben
ser totalmente limpiadas con desinfectante,
afeitadas y frotadas con etanol al 70% antes de
la inyección. En general, los puntos de
inyección son áreas cerca de los linfonodos
mayores, preferiblemente en el cuello y dorso
del animal, mientras que debe ser subcutánea
con el fin de reclutar el mayor número de
células   presentadoras     de     antígeno    y,
consecuentemente, obtener un mayor número de
anticuerpos. En la Figura1 se muestran las áreas
recomendadas de inmunización en el caballo.
                                                        Fig. 11- Áreas de inmunización
                                                        recomendadas en caballos

La trazabilidad del proceso de inmunización es
crucial para el control de calidad el antiveneno producido. Los detalles a ser registrados
son la data de inmunización, los lotes de veneno usados con su número de referencia, el


                                                                                         71
adyuvante usado, el nombre del veterinario y del personal al cargo del proceso y
reacciones o enfermedades puntuales.
El título de antiveneno en los animales inmunizados debe ser seguido durante el proceso
ya sea in vitro, usando EIA, en la fase de inmunización, o in vivo, mediante ensayos de
la potencia de neutralización de la letalidad antes de la recolección de sangre.


* Puntos clave:
   -   Las soluciones de veneno deben ser preparadas de modo que se minimice la
       digestión proteolítica y desnaturalización de las proteínas, y en condiciones
       asépticas para evitar la infección en los puntos de inyección.
   -   El tipo de adyuvante usado se basa en criterios de efectividad, efectos
       secundarios, facilidad de preparación y coste.
   -   La inmunización debe ser realizada subcutáneamente con inyecciones de
       pequeños volúmenes en puntos cerca del sistema linfático del animal.
   -   Todos los pasos de la inmunización así como la recolección de sangre deben ser
       trazables.
   -   Después de la recolección de sangre para producir antiveneno, los animales
       deben descansar un periodo de 3 a 8 semanas antes de una nueva ronda de
       inmunización.




Recolección y control del plasma animal para el fraccionamiento


El plasma como materia prima está mucho más indicado que el suero porque los
eritrocitos pueden ser devueltos, por lo tanto se previene la anemia y hipovolemia en el
animal donante y permite sangrados más frecuentes. También hace posible una mayor
recuperación de anticuerpos por donación y está menos contaminado con hemoglobina.
La separación del plasma de la sangre no-coagulada es mucho más rápida que el
proceso de separar del suero de la sangre coagulada.


Cuando un animal ha sido inmunizado, desarrollando el título de antiveneno esperado,
y es declarado sano tras una revisión veterinaria, puede ser sangrado. Durante el
sangrado, los animales tienen que estar lo más seguros y confortables posible, en un
ambiente tranquilo, para minimizar las posibilidades de lesión en el animal o el

                                                                                     72
personal. Se deben dar las circunstancias para disminuir el potencial de estrés al
mínimo. La operación se realiza mediante venopunción de la vena yugular externa. El
área circundante al punto de punción debe ser afeitada y exhaustivamente lavada y
desinfectada. Si durante el proceso un animal muestra signos de angustia o dolor, se
debe terminar de inmediato. Además, los animales deben permanecer en observación
como mínimo una hora después del sangrado para detectar cualquier signo de
alteraciones físicas. La identidad de los animales debe ser registrada inmediatamente
antes de la venopunción, y todas las botellas o bolsas de sangre o plasma tienen que
estar etiquetadas con la siguiente información: número de referencia del animal,
especificidad el antiveneno, número de unidad de plasma y data de recolección.


Recolecta y almacenamiento de sangre entera
El volumen de sangre obtenido depende del tamaño de las especies usadas, pero se
recomiendan alrededor de 13-15ml/kg de sangre por sesión de sangrado. En la oveja, la
producción típica es de 0.5l de sangre, mientras en el caso del caballo oscila entre 3 y 6l.
La sangre se recolecta, idealmente, en bolsas de plástico que contienen anticoagulante
citrato. Normalmente, la proporción de volumen entre anticoagulante y sangre es de 1:9.
Durante el sangrado, se debe garantizar un flujo constante de sangre, y ésta debe ser
mezclada continuamente con la solución anticoagulante para evitar el riesgo de
activación de la cascada de coagulación y, por lo tanto, evitar la formación de coágulos.
La duración de una sesión de sangrado oscila entre los 30 y 45 minutos.


Las bolsas o botellas donde se recolecta la sangre deben ser limpiadas externamente y
almacenadas en una sala refrigerada (2-8ºC) para el proceso de separación del pasma y
las células sanguíneas. No deben ser almacenadas más de 24 horas antes de la reinfusión
de los glóbulos rojos. El plasma hiperinmune es separado de las células sanguíneas bajo
condiciones asépticas y se transfiere a contenedores estériles (bolsas de plástico,
botellas o contenedores de acero inoxidable).


Después de la recolección de sangre se recomienda la reinfusión de los eritrocitos
durante las primeras 24 horas y tras ser suspendida en una solución salina estéril a 32-
37ºC antes de la infusión. Este procedimiento, donde la sangre entera se recolecta y los
eritrocitos son reinfundidos en el animal se define comúnmente como “aféresis manual”


                                                                                         73
Recolección del plasma mediante aféresis automática y almacenamiento
El uso de máquinas de plasmaféresis garantiza que el animal no sufra hipovolemia y
reduce el riego de errores humanos por mala manipulación, en particular durante la
reinfusión de los eritrocitos al donante. También tiende a existir menos contaminación
por células sanguíneas. Durante el proceso se recolecta la sangre entera del animal, se
mezcla con el anticoagulante y se pasa a través de un separador de células automático.
El plasma se separa de los componentes celulares de la sangre, que son retornados al
animal, completando unos ciclos de recolección-separación y retorno. El plasma se
separa de las células rojas de la sangre mediante centrifugación o filtración, o una
combinación de ambas. Para caballos, la media de volumen obtenido está alrededor de
los 6 litros por sesión y el proceso dura de 1 a 4 horas. Las bolsas de plasma deben ser
almacenadas en una sala refrigerada (2-8ºC) en oscuridad hasta que empiece el proceso
de fraccionamiento.


Control del plasma antes del fraccionamiento
Antes del fraccionamiento, los pools de plasma deben ser revisados en busca de
precipitados, hemólisis y contaminación bacteriana. La capacidad neutralizante tiene
que ser garantizada para que el antiveneno resultante esté dentro de los valores de
potencia esperados. Los pools deben ser descartados si la carga biológica excede los
límites establecidos en el dossier de comercialización o si la potencia neutralizante está
por debajo del límite establecido por el productor. Finalmente, un plasma claramente
hemolizado tampoco debe ser usado en el fraccionamiento.


* Puntos clave:
   -   Cuando los animales han desarrollado una respuesta adecuada contra los
       venenos, y si tienen una buena salud, pueden ser sangrados para la producción de
       antiveneno.
   -   El plasma es preferible al suero como materia prima.
   -   Se recomienda realizar una plasmaféresis, ya sea manual o automática.
   -   Se debe garantizar la trazabilidad entre el animal donante y el pool de plasma.
   -   El plasma debe ser revisado antes del fraccionamiento para corroborar que
       cumple los requisitos establecidos, en particular la potencia de neutralización.
   -   Deben existir certificados veterinarios declarando que los animales donantes son
       revisados periódicamente para garantizar que están en buena salud.

                                                                                          74
Purificación de las inmunoglobulinas y fragmentos de inmunoglobulinas en la
producción de antiveneno
La purificación de las inmunoglobulinas y fragmentos de inmunoglobulinas para la
producción de antiveneno debe tener como objetivo productos de una calidad, seguridad
y efectividad consistentes. De particular relevancia es el control de los riesgos
microbiológicos, contaminaciones con partículas y pirógenos, y la existencia de un
sistema de documentación que garantice la trazabilidad de todos los pasos de la
producción.

Purificación de la substancia activa
Los antivenenos pueden son preparados a partir del pool de plasma inicial usando
diferentes métodos para obtener una de las siguientes substancias activas:
       a) moléculas IgG enteras
       b) fragmentos F(ab’) 2
       c) fragmentos Fab


a) Purificación de antivenenos con IgG enteras.
Un posible protocolo se basa en la precipitación con sulfato de amonio, que lleva a una
recuperación de anticuerpos de entre el 40 y 50% y a la formación de agregados
proteínicos. El producto final acostumbra a contener relativamente una proporción alta
de proteínas contaminantes, como la albúmina. Esto compromete la seguridad del
producto, dado que una alta incidencia de reacciones adversas se han descrito como
respuesta al uso de antivenenos de IgG enteras.


Otra alternativa es la precipitación con ácido caprílico, que permite la producción de
antivenenos de una pureza relativamente alta y con un bajo contenido de agregación
proteínica, debido a que las inmunoglobulinas no precipitan. La producción puede
alcanzar hasta un 60-75% de la actividad en el plasma inicial. La eficacia y seguridad
del antiveneno producido a partir de este proceso han estado demostradas en ensayos
clínicos.




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b) Purificación de antivenenos con F(ab’) 2
Este proceso se basa en el método de la digestión del plasma de caballo con la pepsina,
llevando a una degradación de muchas proteínas que no son IgG, y a una escisión de las
IgG en fragmentos F(ab’) 2 mediante la eliminación y digestión del fragmento Fc en
pequeños péptidos. Una vez digerido con la pepsina, el proceso se completa con la
precipitación mediante sulfato de amonio o ácido caprílico. Actualmente el método más
usado por los fabricadores de fragmentos de F(ab’) 2 comprende la digestión con
pepsina, la precipitación con sulfato de amonio y la diafiltración tangencial. La
producción de este protocolo de fraccionamiento oscila normalmente entre el 30 y 40%.
El proceso completado mediante precipitación con ácido caprílico solo se ha mostrado a
nivel experimental, y nunca a gran escala.


c) Purificación de antivenenos con Fab
En esta operación se acostumbra a usar plasma hiperinmunizado de oveja. Se usa la
papaína para llevar a cabo la digestión enzimática, y en el proceso de preparación del
fragmento se puede usar sulfato de amonio, sulfato de sodio o ácido caprílico.


En cualquier de los tres casos anteriores, los fabricantes pueden incluir pasos
adicionales para mejorar la pureza del producto. Por ejemplo, la cromatografía de
intercambio de iones puede usarse con éxito para la purificación del antiveneno
basándose en la diferencia de carga con los contaminantes. La cromatografía por
afinidad puede ser diseñada para ligar las inmunoglobulinas o sus fragmentos, aunque el
proceso de afinidad puede afectar en la recuperación y los anticuerpos de alta afinidad
pueden perderse o ser desnaturalizados debido a las duras condiciones de elución
necesarias para eluirlos del material cromatográfico.


Debido a las diferencias en el peso molecular, la farmacocinética de las moléculas IgG
enteras (aproximadamente 150kDa), los fragmentos F(ab’) 2 (aproximadamente 100kDa)
y los fragmentos Fab (aproximadamente 50kDa) es muy distinta. En los pacientes
envenenados, los fragmentos Fab tienen un mayor volumen de distribución y alcanzan
rápidamente los compartimentos extravasculares, aunque son eliminados mayormente
por vía renal, por lo que tienen una vida media de eliminación corta (de 4 a 24 horas).
Por otro lado, los fragmentos F(ab’) 2 y las moléculas IgG enteras no se eliminan por vía
renal, gozando así de una vida media de eliminación prolongada (entre 2 y 4 días).

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Idealmente, el volumen de distribución de un antiveneno debe ser lo más similar posible
al volumen de distribución de las toxinas principales del veneno en particular. En
venenos compuestos por toxinas de bajo peso molecular, como el de algunos elápidos,
éstas son rápidamente absorbidas hacia el corriente sanguíneo y distribuidas al espacio
extravascular, donde están localizados los objetivos de las toxinas. En este caso, es ideal
el uso de un antiveneno de alto volumen de distribución y que alcance rápidamente el
espacio extravascular, como es el caso de los antivenenos con Fab.


Si el veneno en cuestión contiene toxinas de alto peso molecular, como el de algunas
víboras, muchos tienen acción intravascular provocando hemorragias y coagulopatías.
Ahora la situación es diferente, porque el tiempo requerido por las toxinas para
distribuirse es mas largo y los objetivos se encuentran en el compartimiento
intravascular. En este caso, un antiveneno elaborado mediante Fab neutralizará las
toxinas que ya han alcanzado la circulación pero, después de cierto tiempo, los
fragmentos serán eliminados y las toxinas aún no neutralizadas alcanzarán la
circulación, dando lugar al conocido fenómeno del envenenamiento recurrente. Para
evitar esto, es necesaria una administración repetida de antiveneno para mantener los
niveles terapéuticos de Fab en la circulación o, preferiblemente, usar los antivenenos
elaborados a partir de IgG enteras o F(ab’) 2 por su mayor vida media de eliminación.


Durante la formulación de los antivenenos después de la diafiltración se debe considerar
la opción de añadir sales para ajustar la osmolalidad, la adición de conservantes u otros
excipientes si son necesarios para la estabilidad de las proteínas o el ajuste del pH. En
general, los antivenenos están formulados a pH neutral (pH 7.5 ± 0.5). La formulación
a pH superiores a 7.5 no está recomendada porque en situaciones de alcalinidad la
estabilidad de las inmunoglobulinas y sus fragmentos puede ser muy pobre y favorecer
la formación de agregados.


El producto final debe ser analizado para demostrar su pureza y potencia, esterilidad,
formulación, limite de pirógenos y/o de contenido endotoxinas bacterianas y que
cumpla las especificaciones de contenido agregado. Una vez comprobado todo esto el
producto es embotellado en contenedores de cristal (ampollas o viales) que deben ser
adecuadamente identificados y almacenados en un área de cuarentena. Muestras de los
antivenenos deben ser enviadas al laboratorio de control de calidad para ser analizadas.

                                                                                        77
Cuando un antiveneno cumple con todos los controles de calidad establecidos, debe ser
correctamente identificado y etiquetado. En el vial o ampolla deben estar indicados:
   -   nombre del producto y del productor
   -   especies animales usadas para producir el antiveneno
   -   número de lote
   -   presentación farmacológica (líquida o liofilizada)
   -   volumen contenido
   -   vía de administración
   -   especificidad y potencia de neutralización
   -   condiciones de almacenamiento
   -   fecha de caducidad


Los paquetes, en los cuales se empaquetan los viales y ampollas, deben incluir además
información referente al producto como:
   -   especificidad y potencia de neutralización
   -   dosis recomendada
   -   procedimiento de reconstitución si está liofilizado
   -   modo y frecuencia de administración
   -   detalles de los síntomas de los efectos adversos
   -   condiciones de almacenamiento
   -   indicación de que se trata de un producto de uso único.


El uso de conservantes debe ser considerado en el producto final, sobre todo en los
antivenenos en forma líquida. Agentes antimicrobianos como el fenol (a
concentraciones de 2.5g/l) o el cresol (<3.5g/l) son actualmente usados. Por otro lado,
está contraindicado usar conservantes que contengan mercurio, porque el volumen de
antiveneno requerido para el tratamiento de un envenenamiento (por encima de 50ml)
puede llevar a exposiciones al mercurio superiores a la recomendada, siendo de especial
importancia en niños pequeños.


Los antivenenos están disponibles en forma líquida o liofilizada. En el segundo caso,
pueden estar almacenados a temperaturas que no excedan los 25ºC son generalmente


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distribuidos en establecimientos donde la cadena de frío no puede ser garantizada, como
en muchas regiones tropicales del mundo.


Todos los viales o ampollas de cada lote de antiveneno líquido deben ser
inspeccionados, ya sea visualmente o mediante técnicas mecánicas. En caso de turbidez,
coloración anormal, presencia de partículas o defectos en el vial, tapón o cápsula el
antiveneno debe ser descartado.


* Puntos clave:
   -   Los antivenenos deben ser elaborados usando procedimientos de fraccionamiento
       que estén bien establecidos, validados y mostrados para obtener un producto con
       una seguridad y eficacia garantizada.
   -   Los antivenenos se pueden obtener de moléculas IgG enteras, fragmentos F(ab’) 2
       o fragmentos Fab.
   -   Las preparaciones son formuladas, esterilizadas por filtración y dispensadas en
       los contenedores finales. La formulación debe puede contener agentes
       conservantes.
   -   Los antivenenos pueden presentarse en forma líquida o liofilizada.
   -   Los fragmentos Fab tienen un mayora volumen de distribución y una vida media
       de eliminación mucho más corta que las moléculas IgG y los fragmentos Fab.


Control del riesgo de infección
Hay diferentes enfoques reconocidos a la hora de reducir el riesgo de infección en los
productos biológicos:
   -   minimizar el contenido de virus inicial mediante la implantación de un sistema
       de calidad para la producción de primeras materias.
   -   contribuir en los procesos de inactivación y/o eliminación de virus residuales
       durante la fabricación del producto.
   -   responder adecuadamente y a tiempo ante cualquier infección durante el uso
       clínico del producto.


Existen informaciones sobre virus que afectan a caballos (e.g. virus arteritis equina o
herpesvirus equino),    cabras y ovejas (e.g. adenovirus, virus de la legua azul o
rotavirus). Son virus con genoma DNA o RNA, con o sin envoltura lipídica, y con

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tamaños de una amplia variedad (de 22 a 300 nm). Algunos de estos virus son
considerados patogénicos para los humanos, por lo que se debe prestar especial
atención.


Basándonos en la experiencia con productos con plasma humano, un proceso de
fabricación de antiveneno que incluye dos pasos para la reducción viral (como mínimo
un paso de inactivación viral) debería proporcionar un nivel de seguridad satisfactorio.


Para lograr esta seguridad respecto al riesgo de infección por virus son necesarios
estudios de validación de virus. Para ello, los estudios de validación deben ser
realizados usando como mínimo tres virus que muestren características estructurales
diferentes. El fabricante de antiveneno debe identificar primero aquellos pasos que
probablemente eliminen o inactiven virus y, luego, proporcionar evidencias de la
disminución de la extensión del virus en el proceso específicamente evaluado.


La infectividad viral, determinada normalmente mediante cultivos celulares, debe ser
cuantificada antes e inmediatamente después del paso evaluado para determinar la
eliminación de virus lograda. Los resultados se expresan convencionalmente como
logaritmos (log) de la reducción de la infectividad observada. La infectividad total o
carga viral se calcula multiplicando el título infeccioso (unidades infecciosas por ml)
por el volumen. Típicamente, una reducción viral de 4 logs o más representa un paso
fiable de seguridad viral. Entre los diferentes pasos del proceso de la producción de
antiveneno, los tratamientos con ácido caprílico y un pH bajo son conocidos por
contribuir a la seguridad ante virus de envoltura lipídica. El uso de agentes
antibacterianos como el cresol, el fenol y mas raramente el formaldehído, añadidos al
plasma inicial o a las muestras finales de antiveneno líquidas a una concentración
máxima de un 0.25-0.35% también se cree que puede tener una posible contribución en
la seguridad viral de los antivenenos.


Los virus elegidos para realizar los estudios de validación deben parecerse lo máximo
posible a aquellos que pueden ser presentes en la material plasmático inicial. El virus de
la estomatitis vesicular (VSV) o el virus del Oeste del Nilo (WNV) son ejemplos de
virus de transmisión plasmática y envoltura lipídica relevantes en los caballos.


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En el caso de las Encefalopatías Espongiformes Transmisibles (TSE), no ha sido
identificadas en ninguna especie equina, ni tampoco ha habido ningún caso relacionado
con antivenenos o cualquier otro derivado de sangre equina. De especial preocupación
es el hecho que las TSE incluyen el Scrapie en las ovejas y cabras, que aunque en menor
frecuencia que el caballo, son usadas para la elaboración de antivenenos. Así pues, la
sangre de pequeños rumiantes debe ser evitada para la elaboración de de productos
biológicos o ser seleccionada muy cuidadosamente de fuentes conocidamente libres de
TSE.


* Puntos clave:
   -   El proceso de elaboración debe contener como mínimo uno, y, preferiblemente,
       dos pasos designados a la reducción viral.
   -   Los manipuladores deben ser alentados a evaluar y validar la capacidad de
       inactivar o eliminar virus de sus procesos de elaboración (en particular la
       digestión a bajo pH y el tratamiento con ácido caprílico)
   -   Cuando se usan ovejas para la producción de plasma, los animales se deben
       obtener de fuentes evaluadas con un insignificante riesgo de tener Scrapie.


Control de calidad de los antivenenos
El control de calidad del producto final es un elemento clave en la garantía de los
antivenenos. Las pruebas del control de calidad deben ser realizadas por el fabricante o
bajo su responsabilidad antes de que el producto sea comercializado. Los resultados
obtenidos deben cumplir las especificaciones aprobadas para cada producto o sus
intermediarios, y son parte del registro del lote. Las pruebas incluidas en el control de
calidad del producto final son las descritas a continuación.


Aspecto: el aspecto del producto (e.g. color del líquido, aspecto del polvo) debe cumplir
la descripción presente en el dossier de comercialización.
Solubilidad: el tiempo desde la adición de disolvente hasta la disolución completa de un
antiveneno liofilizado debe ser de 10 minutos o menor a temperatura ambiente. La
solución no debe ser turbia.
Volumen extraíble: el volumen extraíble del contenedor debe estar en conformidad con
el volumen establecido en la etiqueta.


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Prueba de potencia de neutralización de veneno: determina la efectividad del antiveneno
para neutralizar la actividad tóxica del veneno de serpiente contra el cual ha sido
diseñado para actuar. El primer paso es determinar la actividad letal del veneno y se
basa en buscar la dosis letal media (DL 50 ) usando ratones de un intervalo de peso
concreto:
   -   Determinación del intervalo de DL 50  se inyectan dosis precisas (0.2-0.5ml) de
       veneno diluido en una solución salina a un ratón, vía inravenosa o
       intraperitoneal. Se registran las muertes a las 24h (vía i.v) o 48h (vía i.p). En base
       a esto, se elabora un intervalo de dosis causantes una mortalidad de 0-100% y
       por tanto se reduce el intervalo de dosis de veneno necesarias para estimar
       formalmente la actividad tóxica del veneno.
   -   Dosis letal media (DL 50 )  Un mínimo de 5 ratones (para obtener resultados
       significativos) son inyectados intravenosamente con un volumen preciso (0.2-
       0.5ml) de diferentes dosis de veneno diluidas en solución salina estéril. Las
       muertes se registran a las 24h y se calcula la DL 50 mediante el método de Probit,
       Spearman-Karber o procedimientos alternativos (como métodos no paramétricos)
       La DL 50 de un veneno se define como la mínima cantidad de veneno que cause la
       muerte en el 50% de los ratones inyectados
La prueba para evaluar la potencia de neutralización de un antiveneno se llama dosis
media efectiva (De 50 ):
   -   Determinación del intervalo de DE 50  Múltiples de la LD 50 del veneno son
       mezclados con diferentes dosis de antiveneno e incubados a 37ºC durante 30
       minutos y cada mezcla se inyecta a un ratón. Ahora se puede establecer un
       intervalo de volumen de antiveneno que se traduce en un 100% de supervivencia
       o un 100% de mortalidad en los ratones inyectados.
   -   Dosis media efectiva (DE 50 )  Se incuban a 37ºC durante 30 minutos mezclas
       de una cantidad fija de veneno con varios volúmenes de antiveneno. Alícuotas de
       un volumen preciso (0.2-0.5ml) de cada mezcla se inyecta intravenosamente en
       un grupo de generalmente 5 o 6 ratones. Un grupo de ratones control es
       inyectado con una mezcla de veneno con solución salina (sin antiveneno) para
       confirmar que la dosis de veneno usada induce un 100% de mortalidad. Se
       registran las muertes a las 24 horas y se analizan los resultados del mismo modo
       que con la DL 50 . La DE 50 se define como el volumen de antiveneno que protege
       el 50% de los ratones inyectados. Puede ser expresada de distintas formas:

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           o mg de veneno neutralizados por ml de antiveneno.
           o µl de antiveneno requerido para neutralizar un mg de veneno.
           o número de DL 50 de veneno neutralizadas por ml de antiveneno.


Osmolaridad: determina la tonicidad de la solución antiveneno y se recomienda que sea
al menos de 240 mosmol/kg.
Identificación: cuando distintos tipos de antivenenos son producidos por un mismo
laboratorio, la identificación de cada lote debe ser comprobada. Puede incluir
evaluaciones biológicas así como pruebas fisicoquímicas y inmunológicas.
Concentración de proteínas: calculada mediante la determinación del nitrógeno de
Kjedahl. Preferiblemente no debe exceder los 10 g/dl.
Pureza: la sustancia activa debe constituir la gran mayoría de la preparación, idealmente
más de un 90%. Se determina mediante métodos electroforéticos.
Distribución del tamaño molecular: la presencia de agregados y otros componentes en
los antivenenos se puede evaluar mediante una cromatografía líquida de exclusión de
tamaño.
Pirógenos: los antivenenos debe cumplir con la prueba de los pirógenos en el conejo. En
esta prueba, se inyecta el antiveneno en la oreja del conejo y se mide la temperatura
rectal en intervalos de tiempo diferentes después de la inyección.
Esterilidad: los antivenenos deben ser libres de bacterias u hongos y eso se demuestra
mediante cultivos. Como pueden llevar conservantes en su formulación, estos deben ser
neutralizados antes de que las muestras sean cultivadas para la determinación.
Concentración de conservantes: la concentración de fenoles no puede exceder los 2.5g/l
y la de los crisoles los 3.5g/l.
Humedad residual: en los antivenenos liofilizados se puede determinar mediante
métodos gravimétricos (evaluando la pérdida de peso por calor), el método Kart-Fischer
o métodos termogravimétricos.
Determinación de la concentración de cloruro sódico y del pH mediante indicadores
automáticos




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* Puntos clave:
   -   El control de calidad de los antivenenos, tanto para el producto final como los
       intermedios, debe ser realizado por los fabricantes.
   -   Hay una serie de pruebas establecidas para garantizar la calidad del producto
       (e.g. concentración de proteínas, potencia de neutralización o prueba de
       esterilidad)
   -   Agencias de reglamentación nacional revisarán las pruebas realizadas caso por
       caso y seleccionarán que productos desarrollar.


Estabilidad, almacenamiento y distribución de los antivenenos
Los estudios de estabilidad son cruciales para definir la vida útil del producto y están
destinados a demostrar que los antivenenos permanecen estables y eficaces hasta la
fecha de caducidad. Se considera que las preparaciones líquidas tienen una vida útil de
más de 3 años a 2-8ºC, y las preparaciones liofilizadas de más de 5 años cuando se
mantienen a temperatura ambiente y en la oscuridad. Aun así, es recomendable realizar
pruebas de estabilidad teniendo en cuenta las condiciones de almacenamiento del
destino del producto y, preferiblemente, estas pruebas se deben realizar bajo las peores
condiciones de almacenamiento posibles.


Los antivenenos deben almacenarse a una temperatura que se mantenga dentro del
intervalo establecido en las pruebas de estabilidad. Así pues, desviaciones fuera del
intervalo de temperatura, debidas a interrupciones de la cadena de frío durante el
transporte o almacenamiento, pueden resultar probablemente en un deterioro del
producto. Para evitar esto, se deben diseñar programas adecuados de cadena de frío,
como parte del sistema de seguridad sanitaria en cada país.


Ya que la mayoría de los antivenenos disponibles están en forma líquida, el
mantenimiento de la cadena de frío durante el transporte debe ser garantizado, a pesar
de las dificultades encontradas en zonas rurales de algunos países en desarrollo. Las
autoridades nacionales y regionales deben diseñar estrategias de distribución para
garantizar que los antivenenos están localizaos en las áreas donde son necesarios o usar
los canales de distribución en lugar de otros programas de atención primaria nacionales.
Deben considerarse la especificidad del antiveneno y la cantidad de viales o ampollas
necesarias en un área determinada, sobretodo en países que usen antivenenos

                                                                                      84
monoespecíficos. Los inventarios deben estar en exceso respecto al número estimado de
casos para permitir sobrecargas impredecibles en la demanda local.


* Puntos clave:
   -   En general, los productos líquidos requieren la cadena de frío, sin embargo los
       liofilizados no.
   -   Los fabricantes deben estudiar la estabilidad de los antivenenos con la
       temperatura ambiente de las áreas donde se usará el producto.
   -   La distribución de antivenenos debe basarse en la evaluación epidemiológica de
       los envenenamientos por mordedura de serpiente y en el conocimiento de la
       distribución geográfica de las especies venenosas más relevantes.


Evaluación preclínica de los antivenenos
Un requerimiento ético y fundamental de todos los nuevos agentes terapéuticos para el
uso humano es que su seguridad y efectividad debe ser establecida, inicialmente
mediante ensayos preclínicos in vitro e in vivo, y si el resultado es satisfactorio,
mediante ensayos clínicos con pacientes humanos. Además de los nuevos antivenenos,
una evaluación preclínica también es necesaria si un antiveneno será introducido en un
nuevo país o una nueva zona geográfica.


Es importante diferenciar los ensayos preclínicos “esenciales” de los “recomendados”.
Los ensayos “esenciales” consisten en el conjunto de la evaluación de la actividad
tóxica de los venenos de serpiente (DL 50 ) y la correspondiente eficacia neutralizante del
antiveneno (ED 50 ). Estos ensayos se requieren:
   -   para el control rutinario de calidad de la potencia del antiveneno.
   -   para probar la capacidad de un nuevo antiveneno para neutralizar los venenos de
       serpientes del país o región en el que será introducido.
   -   Para mostrar la eficacia neutralizante de un antiveneno existente contra especies
       médicamente relevantes de una nueva región geográfica o país.
Resumiendo, antes de ser usado terapéuticamente en un humano en una región o país
determinado, un antiveneno debe haber sido evaluado usando el ensayo “esencial”
contra los venenos de serpientes relevantes.




                                                                                        85
Por otro lado, es necesario evaluar si el antiveneno es efectivo en la neutralización de
los efectos fisiológicos más relevantes del veneno en particular. Aquí entra en juego el
concepto de los ensayos “recomendados”. Algunos ejemplos de estos ensayos
“recomendados” son la capacidad de neutralización contra venenos de actividad
hemorrágica, necrotizante, miotóxica, procoagulante o neurotóxica.


Los ensayos in vivo causan un considerable sufrimiento a los roedores, por lo que ha
habido llamamientos para el desarrollo de alternativas para sustituir las pruebas de DL 50
y DE 50 . La controversia reside en el balance entre los beneficios clínicos para los
humanos y el coste de los roedores experimentales (dolor, sufrimiento y angustia).
Existen pruebas alternativas que usan sistemas no sensibles o sistemas in vitro, pero
desgraciadamente actualmente no pueden sustituir las pruebas de toxicidad con
roedores. Se debe fomentar el establecimiento de criterios de valoración humana para
reducir el sufrimiento y limitar la duración de los ensayos, teniendo en cuenta no
invalidar los objetivos de los mismos alterando procesos fisiológicos importantes.
Estos ensayos preclínicos tienen ciertas limitaciones, como por ejemplo que los
protocolos de inyección del veneno no representan la situación natural y las respuestas
fisiológicas de los roedores al envenenamiento y tratamiento puede diferir de las de los
humanos. Es necesario entonces evitar las extrapolaciones simples del ensayo a la
situación clínica.


* Puntos clave:
   -   Las agencias reguladoras de medicamentos deben exigir ensayos preclínicos de
       los antivenenos para determinar la pureza de la preparación y su capacidad de
       neutralización en modelos animales.
   -   Los cálculos estimados de la LD50 y la DE50 son las evaluaciones preclínicas
       más relevantes y deben ser realizadas en todos los antivenenos.
   -   Todos los antivenenos deben ser evaluados ante las patologías específicas
       causadas por los venenos de las serpientes ante los que han sido diseñados.
   -   Las pruebas preclínicas se basan en el uso de roedores de laboratorio e implica
       un alto grado de sufrimiento. Se debe trabajar siempre que sea posible bajo
       anestesia/anestesia y se debe fomentar la búsqueda             de procedimientos
       alternativos in vitro, o de procedimientos menos agresivos o que exijan un menor
       número de animales.

                                                                                       86
Evaluación clínica de los antivenenos
Los antivenenos son inusuales entre los agentes farmacéuticos dado que han sido usados
durante mas de cien años prestando muy poca atención a los ensayos clínicos referentes
a su eficacia y seguridad, pero a partir del 1970 se ha demostrado claramente que se
pueden llevar a cabo ensayos para encontrar la dosis en humanos víctimas de
envenenamiento por mordedura de serpiente.
El camino estándar para la evaluación de un nuevo producto terapéutico es:
   -   Fase1: estudios con voluntarios sanos (detección de efectos adversos
       imprevistos).
   -   Fase2: estudios de la eficacia y seguridad límite (para buscar la dosis).
   -   Fase3: evaluación clínica a gran escala (ensayos de control aleatorios).
   -   Fase4: vigilancia post-comercialización.


Los estudios de la fase1, con voluntarios sanos, no es apropiado debido al riesgo de
anafilaxis y otras reacciones en los voluntarios. Los estudios de la fase2 están
normalmente dirigidos a optimizar las dosis, establecer la seguridad del producto y
otorga una indicación de eficacia. En la fase3 se establece la eficacia del producto,
normalmente en comparación con un producto ya existente, u             ocasionalmente un
placebo. La fase4 o vigilancia post-comercialización puede ser la el único modo de
estudiar la seguridad y eficacia del antiveneno en un gran número de pacientes, debido a
la dificultad de realizar ensayos clínicos con antivenenos en algunos sitios.


En el caso de los antivenenos, los ensayos clínicos están dirigidos a tres cuestiones
importantes:
   -   evaluar la dosis inicial óptima de antiveneno
   -   evaluar la eficacia del antiveneno
   -   evaluar la seguridad de un antiveneno, particularmente la incidencia y severidad
       de las reacciones tempranas y tardías.


La dosis terapéutica de antiveneno administrada por vía intravenosa depende de:
   -   la cantidad de veneno inyectado
   -   la potencia neutralizadora del veneno
   -   el régimen de dosis


                                                                                     87
La dosis se calcula para neutralizar cierta dosis de veneno y no varía entre adultos y
niños. Como parte del diseño del estudio, es importante determinar el número mínimo
de pacientes requeridos para establecer resultados significativos usando cálculos del
tamaño de la muestra. La dosis mínima aparentemente efectiva puede ser evaluada en
ensayos más grandes de la fase2 o comparada con otro antiveneno o una dosis diferente
en los ensayos controlados aleatorios de la fase3.


Los ensayos controlados aleatorios pueden demandar de un gran número de pacientes
dada la considerable variación individual en la manifestación clínica del
envenenamiento. El nuevo antiveneno se compara con el tratamiento estándar existente
o, si no existe ninguno, se pueden comparar dos dosis diferentes del antiveneno
evaluado. Para evitar el sesgo, los pacientes deben ser alojados aleatoriamente en los
grupos y el estudio debe ser blindado, como mínimo a aquel personal de investigación
que está evaluando la respuesta clínica e idealmente a los investigadores y participantes.


Los criterios de evaluación usados en los estudios de antivenenos deben ser
predefinidos y objetivos. Los criterios más comunes incluyen la mortalidad, el tiempo
necesario restaurar la coagulabilidad de la sangre, otros parámetros laboratoriales como
el tiempo de la protrombina o mejoría clínica de la neurotoxicidad. Los pacientes deben
ser observados cuidadosamente durante el tiempo suficiente para revelar muestras de
envenenamiento recurrente.


Debido a que los antivenenos tienen como componentes proteínas extrañas, los efectos
adversos son un riesgo inevitable en la terapia. Las tasas de reacción están
correlacionadas con la pureza del antiveneno y la cantidad de proteína infundida. Una
observación clínica continuada durante varias horas es necesaria después del tratamiento
para detectar reacciones agudas (urticaria, fiebre, hipotensión o broncoespasmos).
Reacciones adversas tardías (fiebre, linfadenopatías, proteinuria o neuropatías) pueden
ocurrir semanas después.


Los estudios de la fase4 pueden ser de mucha mayor importancia en los antivenenos que
en el caso de otros productos. Aunque tradicionalmente se enfocan en la seguridad, con
los antivenenos es crucial examinar también la eficacia así como la frecuencia de
aparición de efectos secundarios. Para ello, los países que usan antivenenos deben

                                                                                       88
animar a los clínicos y al personal de centros sanitarios a informar activamente a las
autoridades nacionales y fabricantes de cualquier falta de eficacia clínica o de la
aparición de reacciones adversas. Las autoridades y el fabricante deben evaluar estos
informes y, consultando entre ellas mismas y con especialistas en el campo, intentar
valorar su significado. En algunos casos, como puede ser el uso de un antiveneno en una
nueva región geográfica, está indicado instalar estudios observacionales para garantizar
una seguridad y efectividad adecuadas.


Unos estudios post-comercialización de alta calidad permitirán a los clínicos, salud
pública y fabricantes identificar antivenenos con baja efectividad, instancias de usos y
dosis incorrectas y problemas de seguridad derivados del uso de antivenenos.


* Puntos clave:
   -   Los ensayos preclínicos y clínicos de antivenenos han sido muy descuidados en
       el pasado pero actualmente se ha demostrado que son factibles y útiles.
   -   Realizar estudios prospectivos observacionales es fundamental para garantizar la
       eficacia y seguridad de un antiveneno usado por primera vez en una nueva región
       geográfica.
   -   La vigilancia post-comercialización debe jugar un papel importante en la
       evaluación de la eficacia i seguridad de los antivenenos.


4.5. Papel de las autoridades nacionales de reglamentación
Las autoridades nacionales de reglamentación deben asegurar que los productos
biológicos distribuidos en sus territorios, importados o elaborados localmente, son de
buena calidad, seguros y eficaces. Las responsabilidades incluyen la aplicación y
implementación de regulaciones nacionales efectivas, y la configuración de estándares y
medidas de control adecuadas. En el procedimiento de conceder una licencia de
comercialización para un antiveneno, información sobre las materias primas, el plasma
derivado de los animales hiperinmunizados, los procesos de producción y los métodos
para caracterizar los lotes de producto debe estar documentada como parte del dossier.




                                                                                     89
La garantía de calidad, seguridad y efectividad en los antivenenos de serpiente implica
la evaluación de información con respecto a:
   -   la preparación de los lotes de veneno representativos de los animales venenosos y
       de la zona geográfica donde se distribuirá el antiveneno.
   -   el control y trazabilidad de los animales inmunizados y del proceso de
       inmunización.
   -   la recolecta, almacenaje y transporte del plasma hiperinmune.
   -   el fraccionamiento del plasma para la producción de antiveneno.
   -   los métodos usados para controlar los lotes de producto.
   -   la información preclínica referente a la eficacia esperada de los productos para
       tratar los envenenamientos locales.
   -   la eficacia clínica de antivenenos localmente elaborados o importados ante las
       especies de serpientes encontradas en el país, a través de vigilancia activa de la
       comercialización.


En muchos países, las autoridades nacionales de reglamentación han implantado un
sistema de control basado en conceder licencias a los establecimientos, inspeccionarlos
regularmente, y aplicando la implementaron de los requerimientos legales. Esto se debe
aplicar a la producción de plasma animal hiperinmune para fraccionamiento, y el
proceso de elaboración de antiveneno. Para obtener la licencia, los establecimientos
deben mostrar que sus operaciones garantizan el cumplimiento de una serie de
requerimientos de seguridad, calidad y eficacia de los antivenenos.


Las inspecciones deben seguir siempre los procedimientos establecidos, incluyendo una
reunión de apertura, la inspección de las áreas y actividades principales para ver si se
cumplen las buenas prácticas de la elaboración, una reunión de clausura, preparación de
un informe de inspección y un seguimiento de cualquier deficiencia observada. Una
inspección también incluye la observación del personal durante las operaciones y la
comparación con los procedimientos estándares. El informe escrito se envía al
fabricante, al que se le exige notificar a las autoridades sobre los pasos específicos que
se están tomando o planeando para corregir los errores y prevenir su recurrencia.
Las autoridades nacionales de reglamentación tienen la autoridad para retirar la licencia
a un establecimiento si una inspección revela el incumplimiento de los requerimientos o
de las especificaciones del producto.

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4.6. Trabajo de campo sección usos científicos de las serpientes venenosas
David Bitis es el nombre de pila de un cuidador y especialista en extracción de
veneno en serpientes de Valencia. Conocido por sus apariciones en televisión y por
encargarse de la extracción de veneno en el parque temático de Terra Natura
(Benidorm).


1. ¿Qué significan para usted las serpientes venenosas?
Para mi son seres muy respetados y autenticas bellezas, muy ágiles, curiosas, con
mimetismo y mucho dimorfismo, con tácticas particulares y peculiares, colorido, de
las cuales se puede aprender mucho.


2. ¿Cuáles cree que son las condiciones básicas que debe tener una persona a la
hora de iniciarse con este tipo de serpientes?
Conocimiento y estudio extensivo en ofidismo y en especies venenosas y/o
herpetología. Buenas prácticas realizadas antes con serpientes no venenosas, seguidas
de serpientes opistoglifas. A continuación, responsabilidad civil, acceso a un banco de
suero antitoxina, protocolos de seguridad, y un gran etcétera.


3. ¿Cuál es la mejor manera de empezar con ellas en cuanto al manejo?
Por supuesto antes hay que practicar con serpientes no venenosas y al cabo de algún
tiempo seguir con especies NO venenosas pero que sean ágiles, escurridizas, rápidas
y con mal carácter.


4. ¿Qué instrumental aconseja utilizar a la hora de manejarlas?
Dos ganchos o uno, dependiendo de la longitud y el grosor de la serpiente, tubos
acrílicos, y las pinzas mecánicas pero sólo como último recurso, ya que estresan mucho
al animal. También guantes de seguridad, cubos, protectores/escudo en caso necesario.


5. ¿Cuáles son las normas básicas a la hora de hacerlo?
Son muchísimas pero resumiré las básicas:
No perder de vista al animal
Siempre guantes
Presencia 2 personas mínimo
Concentración en lo que se está haciendo

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Utilizar escudo si precisa
No prestar atención a cosas ajenas a lo que se esta haciendo
Tener en cuenta la distancia del animal
Si es posible no realizar movimientos en ellas más tarde de las 18:00h por si hay que
acceder a antídotos.
Mantener cerca el extractor de veneno y la pinza mecánica por si hay que recurrir a
ellas.
Etc.


6. En cuanto al mantenimiento y terrario, ¿nos podría explicar los elementos más
importantes que deben colocarse, tanto en relación con el animal como con la
seguridad?
Cerradura, si es posible un divisor en el terrario que se pueda colocar desde fuera para
dividir en terrario en dos, y un cobijo para el animal.
Otro elemento importante para nuestra integridad es que podamos encerrar al animal
con seguridad con el mismo gancho accediendo a la “puerta guillotina”, que el cristal
sea de 5mm, si es posible sólo los frontales, el resto del terrario compacto con PVC
grueso y/o aluminio, con buenos remaches (no usar silicona).


7. ¿Cuáles son los errores básicos y más comunes que se cometen (en cuanto a
mantenimiento o manejo)?
Los errores más comunes que se cometen son el exceso de confianza, no usar el escudo
en algunas especies, estar pendiente de cosas ajenas a lo que se esta haciendo, confiar en
las correderas de cristal frontal y abrir el terrario sin tener localizada antes a la
serpiente.


8. ¿Qué especies (o géneros) se suelen usar más comúnmente para la extracción de
veneno orientada a la producción de sueros antitoxina?
Las especies más utilizadas son Naja sp, Trimeresurus sp, Agkistrodon, Crotalus sp,
Bothriechis sp., Bothrops sp, Dendroaspis sp. y alguna más.




                                                                                        92
9. En cuanto a su reproducción, existen límites en cuanto a número de ejemplares
criados, etc.?
No, no existen.


10. ¿Qué opina sobre la legislación española específica para este tipo de animales
respecto a otros estados como por ejemplo USA? ¿Cree que es suficiente esta
legislación?
La legislación española para este tipo de animales me parece excesiva y tajante. No es
que no sea suficiente, más bien carente de fundamentos y aplicadas sin conocimiento.
Se debería elaborar una legislación por parte de especialistas, desde el conocimiento de
estas especies, es decir, organizarlas y no recurrir a la estricta prohibición así sin más.


11. ¿Cree que es positivo que cada comunidad autónoma legisle sus propias leyes
en cuanto a esta materia?
Si, ya que lo podrían controlar mejor ellas mismas si es más reducido el terreno al que
controlar, pero sin recurrir a la prohibición así porque sí.


12. Para acabar, algún consejo para aquellos que empiezan en este mundillo…
Primero: tener en cuenta la distancia de alcance del animal y siempre quedarse más
lejos de dicha distancia
Segundo: nunca perder la calma ni la entereza
Tercero y lo más importante: ¡nunca se sabe bastante!




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5. VENENOS Y MORDEDURAS

5.1. Características anatómicas a considerar
Las serpientes venenosas en su mayoría tienen cabeza triangular excepto Lachesis muta
y Crotalus durissus en las que tiende a ser ovoide, carecen de párpado y una escama
cubre el ojo que cambia con la ecdisis, en cuanto al movimiento de los ojos la Bothrops
puede hacer un discreto movimiento ocular anteroposterior. El campo visual les permite
ver objetos o animales que se mueven pero no el detalle.
El olfato está bien desarrollado, la lengua y el órgano de Jacobson son las estructuras
que recogen y capturan las partículas olfatorias dispersas en la atmósfera; el órgano de
Jacobson es una formación sacular, par, situado en la bóveda palatina, tapizada por un
epitelio sensorial y comunicado con la boca por medio de un conducto. Cuando ambas
ramas de la lengua penetran en dicha cavidad, ponen en contacto del epitelio las
partículas químicas que estimulan las terminaciones del nervio encargado de transmitir
dichos estímulos al cerebro, esto permite el reconocimiento de su presa, enemigos
naturales y sexo contrario.
Las serpientes se consideran sordas ya que de los huesecillos solo poseen la columella
auris que se encarga de conducir las vibraciones al oído interno, por ello perciben las
ondas vibratorias del piso, pero no las sonoras, excepto cuando tienen una frecuencia
aproximada de 500 ciclos o menos. También poseen un órgano sensorial; la Fosa
termorreceptora alojada en una cavidad situada entre el orificio nasal y el ojo, se
encuentra exclusivamente en las serpientes venenosas de las subfamilia Crotalina, con
un radio aproximado de 14 pulgadas, este órgano capta las radiaciones infrarrojas del
calor emitido por animales homeotermos, permite reconocer y localizar el sitio exacto
donde se encuentra la víctima y posiblemente contribuye a regular la cantidad de
veneno que debe inyectarle; además sirve como rasgo anatómico diferencial con
respecto a serpientes inofensivas. El aparato venenoso es un mecanismo formado por la
glándula venenosa, el colmillo inyector y los músculos que rodean la glándula y
accionan todo el conjunto.
La glándula venenosa es una glándula salivar modificada. Es de forma ovoide, se halla
situada a ambos lados de la cabeza, desde la parte posterior del maxilar superior hasta la
comisura labial, en Bothrops esta glándula se adelgaza en su porción anterior para
convertirse en conducto primario, después de un corto trayecto, este conducto sufre una
dilatación y cambios en su estructura histológica que lo transforman en glándula


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accesoria; esta glándula es más pequeña que la glándula principal, se considera esfínter
y reservorio que controla el flujo de veneno, produce ciertos principios tóxicos,
diferentes tipos de mucopolisacáridos y diluyentes del veneno. Sigue luego un conducto
que vierte el producto de secreción en el colmillo inyector, llamado conducto
secundario. De acuerdo con la forma y movilidad del maxilar superior, la distribución
de la dentadura y la presencia del aparato venenoso existen variaciones estructurales; las
proteroglifas tienen un maxilar superior alargado y en su extremo anterior tienen un
colmillo pequeño de 2 a 3 mm de longitud, curvo, dirigido hacia atrás, perforado
interiormente y comunicado con la glándula productora de veneno; estas características
permiten suponer que el veneno al ser inoculado queda superficialmente en los tejidos y
que mediante una succión rápida podría removerse una cantidad apreciable de dicho
veneno, a este grupo pertenecen las corales, serpientes marinas y cobras de Asia y
África.
Las solenoglifas presentan una disposición más dinámica; el maxilar superior es corto y
voluminoso, se une un colmillo largo, perforado interiormente a manera de aguja
hipodérmica, ligeramente curvo hacia atrás y comunicado con una glándula muy bien
desarrollada, estos colmillos se mudan periódicamente y son reemplazados por los de
reserva que van colocándose en su lugar cuando el colmillo funcional es eliminado, a
veces es posible encontrar dos colmillos debido a que el nuevo se coloca antes de que el
viejo haya sido eliminado. En víboras americanas como Bothrops atrox la longitud del
colmillo puede alcanzar una longitud de 2cm.
Aquí tenemos un ejemplo de la disposición de los colmillos y dientes en las distintas
dentaduras de las serpientes:




   1) Aglifos         2) Proteroglifos      3) Opistoglifos        4) Selenoglifos


                                                                                       95
5.2. Venenos
Los venenos de las serpientes son una saliva especializada que varía su composición de
acuerdo con la especie; están compuestos principalmente por proteínas tóxicas y no
tóxicas, y algunas con actividad enzimática que constituyen entre el 90 al 95% del peso
seco y en muy bajo porcentaje por compuestos no proteicos como carbohidratos,
nucleótidos, lípidos, iones como Na, K, Zn, Ca, Mg, Co, detritus celulares y bacterias.
Según los componentes del veneno se pueden clasificar en venenos neurotóxicos o
venenos hemolíticos.
En los venenos neurotóxicos encontramos, por una parte, las alfa neurotoxinas en
serpientes de la familia Elapidae, las cuales bloquean la transmisión neuromuscular a
nivel postsináptico, impidiendo la unión de la acetilcolina y su receptor muscular, y
parálisis del sistema nervioso periférico.
Por otra parte, las beta neurotoxinas encontradas en serpientes de la familia Elapidae y
Viperidae bloquean la transmisión del impulso nervioso a nivel presináptico y paralizan
la víctima.
Las cardiotoxinas bloquean la transmisión neuromuscular y la conducción axonal,
despolarizan membranas, tienen acción anticolinesterasa, hemolítica, acción tisular
local, acción citotóxica, contractura de músculo esquelético, contractura de músculo liso
y arresto cardiaco.
Proteínas con actividad enzimática, como la hialuronidasa y la fosfolipasa A2 son
comunes en la mayoría de los venenos o la acetilcolinesterasa y la fosfatasa ácida y
alcalina encontradas en el veneno de los elápidos.
La hialuronidasa hidroliza el gel del ácido hialurónico del espacio intersticial,
permitiendo una penetración más fácil del veneno a los tejidos, la fosfolipasa A2 y la
lecitinasa A o hemolisina son responsables de acciones hemolíticas, neurotóxicas y
liberadoras de histamina y de sustancias de reacción lenta; la acción hemolítica puede
ser por hidrólisis de los fosfolípidos de la membrana celular del eritrocito, mediante la
transformación de la lecitina del plasma en lisolecitina o la transformación de cefalina
en lisocefalina.
En los venenos hemolíticos se encuentran sustancias que causan trastornos sanguíneos
como trombocitopenia y/o hemorragia debido a principios activadores de plaquetas que
incluyen proteínas, péptidos y glicoproteínas que inhiben o estimulan la acción
plaquetaria.


                                                                                      96
Los venenos coagulantes pueden actuar por activación del factor X, por conversión de
protrombina en trombina o por conversión directa de fibrinógeno en fibrina.


Venenos neurotóxicos                           Venenos hemolíticos
-Por lo general, las serpientes suelen         -Cualquier sitio anatómico.
morder en los dedos y se quedan                -Los venenos tienen composición muy
adheridas por unos segundos.                   compleja: diversas toxinas y enzimas que
-El veneno generalmente se inocula en          afectan múltiples procesos fisiológicos de
tejido subcutáneo.                             la víctima.
-Dolor leve a moderado en el sitio de la       -Dolor severo, edema, sangrado local,
mordedura y ligero edema.                      equimosis, bulas y necrosis.
-Sin hemorragia, necrosis, ni cuadro           -Efectos locales inmediatos y alteraciones
inflamatorio.      Pueden       presentarse    sistémicas y en los casos moderados y
parestesias.                                   severos.
-Neurotoxicidad: salivación, disartria,        -Alteraciones       sistémicas:    náuseas,
diplopía, ptosis palpebral, parálisis          vómitos, hipotensión arterial, sudoración,
respiratoria,   fasciculaciones,     disnea,   fiebre, oliguria, sangrado sistémico.
dificultad de deglución                        -La severidad del envenenamiento
-El veneno se distribuye por vía linfática y   depende de la cantidad de veneno
hemática.     Llega     a   las     uniones    inoculado. Sitio: en la cabeza y tronco son
neuromusculares, donde produce un              más severas que en las extremidades. Peso
bloqueo sináptico que acarrea el cuadro        y talla del sujeto (a menor volumen mayor
neurotóxico.                                   rapidez de distribución a nivel sistémico,
                                               por eso, en niños el riesgo es mayor).


5.3. Actuación en caso de mordedura
Primeros Auxilios:
- Vendaje compresivo ligero de la zona de la mordedura, con una venda blanda y
siguiendo las directrices clásicas de los vendajes. Es lo que se conoce como “Técnica
Australiana”. Se fundamenta en el hecho de impedir la absorción del veneno por la vía
linfática. Esta medida se recomienda ante la mordedura de cualquier especie de ofidio
venenoso y en detrimento de otras técnicas antiguamente empleadas (torniquetes, corte
y succión del veneno, amputación o cauterización de la zona).
- Traslado urgente del paciente al hospital de referencia.
- Control riguroso de la progresión del envenenamiento e inicio, si fuese necesario, de
las medidas para mantener al paciente estable.
- Colocar vía venosa con sueroterapia de mantenimiento. Siempre en una extremidad
contraria a la de la lesión y habiendo retirado joyas y objetos que puedan comprimir.
- Identificar la especie exótica causante del cuadro para la elección del antídoto a
emplear.

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Tratamiento hospitalario:
1. Ingreso en una unidad de vigilancia intensiva.
2. Búsqueda de signos de cardiotoxicidad, hemotoxicidad, neurotoxicidad, citotoxicidad
y fallos sistémicos progresivos. Especial precaución con las alteraciones hemáticas
tardías (tras 24-48h) y aún a pesar del tratamiento correcto y de una buena evolución
inicial.
3. Administración del suero antiofídico pertinente y bajo las pautas recomendadas por
los respectivos laboratorios farmacéuticos.
4. Previamente a la administración del suero, es obligatoria la realización de una prueba
de hipersensibilidad al mismo, intentando evitar el desarrollo de una reacción de Tipo I
durante la administración del antídoto.
5. Se aconseja la administración de corticoides intravenosos y antihistamínicos antes del
suero y después de la prueba de hipersensibilidad. Los corticoides se mantendrán en
pauta descendente intentando evitar el desarrollo de reacciones de Tipo III.
6. Revisión de la profilaxis antitetánica, profilaxis antibiótica y pauta analgésica a
demanda, evitando el empleo de ácido acetilsalicílico. Limpieza y desinfección de la
herida. Control de las necrosis perilesionales y del desarrollo de mionecrosis extensas
y/o síndromes compartimentales. No realizar nunca fasciotomías profilácticas.




                                                                                      98
6. CONCLUSIONES

Las serpientes venenosas son un grupo de reptiles emergentes en nuestra sociedad,
dónde no hay que olvidar que la mayoría de aficionados y especialistas que se dedican a
ellas –con las instalaciones y requisitos correctamente- y que tanto han aportado en la
difusión de información sobre estas especies lo han estado haciendo desde la sombra,
debido a las múltiples trabas legales con las que se han encontrado.
Pero, ¿por qué ocurre esto? El hecho se encuentra en que tal y como se ha ido
demostrando a lo largo del presente trabajo, la legislación actual sobre serpientes
venenosas es pobre y sin fundamento, debido a que estas leyes no han sido elaboradas
desde la experiencia y el conocimiento de estas especies. Sin ir más lejos, en Madrid
legislaron sobre estos animales y aplicaron la misma regulación que se usa para perros
englobando todo dentro de animales “potencialmente peligrosos”, poniendo al mismo
nivel todos los reptiles de más de 2kg, anfibios, artrópodos venenosos, etc. Realmente
se cometió un grave error, ya que el trato que debe recibir una serpiente de más de 2kg
no es el mismo que el que debería recibir ni un perro, ni cualquier otro animal
englobado como “potencialmente peligroso”.
Por eso, tal y como se ha demostrado, desde la ignorancia no se pueden elaborar este
tipo de leyes. Sería fundamental que en la redacción de estas intervinieran especialistas
y herpetólogos, por tal de regular mejor la vigilancia y el control de este campo.
El problema básico en España es que al encontrarnos con una pobre y carente
legislación en este sentido, se prohíbe sin más.
Otros países como USA, donde la legislación es mucho más rica y avanzada, es más
permisiva en este sentido, ya que facilita a aquellos que se dedican a este tipo de
serpientes mantenerlas de forma legal tras pasar los controles específicos, verificar que
las instalaciones son correctas en cuanto a seguridad y bienestar animal, y tener un buen
seguro que cubra posibles daños.
En conclusión, el futuro de estos animales en cautividad se ha de regular de forma clara
y coherente, además de realizar controles más exhaustivos. En este sentido, es
lamentable que cualquier persona pueda adquirir animales de un extremado riesgo a
través de foros u otros anuncios con esta facilidad, sin imposición alguna. Pero igual de
lamentable es que un especialista u otro aficionado experto en el tema no puedan
trabajar en este campo debido a las continuas prohibiciones. Para ello, todos deberíamos
remar en una misma dirección.

                                                                                      99
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